ОЦІНКА ДЕЗІНВАЗІЙНОЇ ЕФЕКТИВНОСТІ ДЕЗІНФІКУЮЧОГО ЗАСОБУ СУХОДЕЗ
Анотація
Дезінвазійна обробка є однією з ключових ланок поряд з задаванням протиеймеріозних препаратів в боротьбі з еймеріозом птиці. Для ефективного використання дезінфікуючих засобів проти еймерій важлива їх постійна зміна та ротація за діючими речовинами, щоб запобігти виникненню явища резистентності у еймерій. В статті наведені дані щодо розробки засобів боротьби з еймеріозом птиці з використанням дезінфікуючого засобу Суходез. В складі дезінфікуючого засобу, який випускає вітчизняна науково-виробнича фірма «Бровафарма», міститься хлорамін, тимол, сульфат міді, сульфат заліза, сульфат дигідрат кальцію, цеоліт, каолін, ароматизатор. Під час проведення дослідів була проведена перевірка ефективності дії зазначеного засобу на ооцисти Eimeria tenella в концентрації від 0,5 до 3,0 % за експозицій від 10 хвилин до 4 годин. Для досліджень, спрямованих на визначення ефективності дії дезінфектанту на ооцисти Eimeria tenella відібрали проби матеріалу від курей породи Род-Айленд віком 9-12 місяців, з присадибних господарств мешканців Сумського району. Для встановлення діагнозу на еймеріоз використовували лабораторні дослідження посліду птиці за методом Фюллеборна. Для визначення показника дезінвазійної ефективності 10-15 екземплярів ооцист Eimeria tenella поміщали у чашки Петрі додавали розчин Суходезу відповідної концентрації, що слугували відповідними дослідними групами. Контролем слугували чашках Петрі з додаванням аналогічної кількість ооцист, проте замість розчину дезінфектанту до них додавали 5 см3 дистильованої води. Коли закінчувався час експозиції, то чашки з ооцистами промивали п’ять разів та переносили проби на споруляцію в термостат, де їх утримували протягом п’яти діб за температури 26°С, щоденно здійснюючи контроль рівня вологи. Використання 2,5 % концентрації Суходезу забезпечило дезінвазійний ефект за експозиції 60 хв, в свою чергу 3 % концентрація дезінфектанту спричинила порушення цілісності еймерій вже при експозиції 30 хвилин, аналогічний ефект був відмічений і при більший експозиції, що свідчить про ефективність дезінфікуючого засобу Суходез. Відповідно дезінфікуючий засіб Суходез у досліджуваних концентраціях (2-3 %) спричиняє уповільнення та повністю припиняє розвиток ооцист Eimeria tenella та спричинює їх подальший лізис і, таким чином, може бути рекомендований до впровадження у виробництво.
Посилання
2. Angus, K. W., Sherwood, D., Hutchison, G., & Campbell, I. (1982). Evaluation of the effect of two aldehydebased disinfectants on the infectivity of faecal cryptosporidia for mice. Research in veterinary science, 33(3), 379–381.
3. Ayeni, A. O., Dingeldein, E., & Dürr, U. (1972). Studies on the inactivation of coccidian oocysts. Acta veterinaria Academiae Scientiarum Hungaricae, 22(1), 111–122.
4. Berezovskiy, A. V. & Fotina, G. A. (2007). Viznachennya parametriv toksichnosti novogo dezinfektantu «Brovadezplyus» [Determination of toxicity parameters of the new disinfectant «Brovadez-plus»]. Naukovo-tehnichniy byuleten IBT UAAN I DNDKI vet. preparatIv ta korm. dobavok. LvIv, 8, V. 3–4. S. 326–330. [in Ukrainian].
5. Blake, D. P., Knox, J., Dehaeck, B., Huntington, B., Rathinam, T., Ravipati, V., Ayoade, S., Gilbert, W., Adebambo, A. O., Jatau, I. D., Raman, M., Parker, D., Rushton, J., & Tomley, F. M. (2020). Re-calculating the cost of coccidiosis in chickens. Veterinary research, 51(1), 115. https://doi.org/10.1186/s13567-020-00837-2
6. Campbell, I., Tzipori, A. S., Hutchison, G., & Angus, K. W. (1982). Effect of disinfectants on survival of cryptosporidium oocysts. The Veterinary record, 111(18), 414–415. https://doi.org/10.1136/vr.111.18.414
7. Dakhno, I.S., Berezovskyi, A.V., Halat, V.F., Aranchii, S.V. (2001). Atlas helmintiv tvaryn [Atlas of animal helminths] K.: Vetinform, 2001. 117 s. [in Ukrainian].
8. Daugschies, A., Agneessens, J., Goossens, L., Mengel, H., & Veys, P. (2007). The effect of a metaphylactic treatment with diclazuril (Vecoxan) on the oocyst excretion and growth performance of calves exposed to a natural Eimeria infection. Veterinary parasitology, 149(3-4), 199–206. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2007.08.003
9. Daugschies, A., Böse, R., Marx, J., Teich, K., & Friedhoff, K. T. (2002). Development and application of a standardized assay for chemical disinfection of coccidia oocysts. Veterinary parasitology, 103(4), 299–308. https://doi.org/10.1016/s0304-4017(01)00581-7
10. DovgIy M. Yu. (2017). Efektivnist dezinvaziynih vlastivostey dezinfikuyuchih zasobiv pri gelmintozno-protozoyniy invaziyi u silskogospodarskoyi ptitsi. [Effectiveness of disinfestation properties of disinfectants in case of helminthicprotozoan infestation in poultry]. Visnik Zhitomirskogo natsIonalnogo agroekologichnogo universitetu, 3. # 2 (63). S. 63–66. [in Ukrainian].
11. Fayer R. (1995). Effect of sodium hypochlorite exposure on infectivity of Cryptosporidium parvum oocysts for neonatal BALB/c mice. Applied and environmental microbiology, 61(2), 844–846. https://doi.org/10.1128/aem.61.2.844-846.1995
12. Fayer, R., C. A. Speer, & J. P. Dubey (1997). The general biology of Cryptosporidium, p. 1-41. In R. Fayer (ed.), Cryptosporidium and cryptosporidiosis. CRC Press, Boca Raton, FL.
13. Grier N. (1979). Synthesis and antimicrobial evaluation of quaternary salts of 4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine and 3,6-dimethyl-6-phenyl-tetrahydro-2H-1,3-oxazine. Journal of pharmaceutical sciences, 68(4), 407–411. https://doi.org/10.1002/jps.2600680404
14. Guimarães, J. S., Jr, Bogado, A. L., da Cunha, T. C., & Garcia, J. L. (2007). In vitro evaluation of the disinfection efficacy on Eimeria tenella unsporulated oocysts isolated from broilers. Revista brasileira de parasitologia veterinaria = Brazilian journal of veterinary parasitology : Orgao Oficial do Colegio Brasileiro de Parasitologia Veterinaria, 16(2), 67–71.
15. Györke, A., Kalmár, Z., Pop, L. M., & Şuteu, O. L. (2016). The economic impact of infection with Eimeria spp. in broiler farms from Romania. Revista Brasileira de Zootecnia, 45, 273-280.
16. Haug, A., Thebo, P., & Mattsson, J. G. (2007). A simplified protocol for molecular identification of Eimeria species in field samples. Veterinary parasitology, 146(1-2), 35–45. https://doi.org/10.1016/j.vetpar.2006.12.015
17. Hilbrich P. (1975). Desinfektionsversuche an Eimeria-tenella-Oozysten [Disinfection tests on Eimeria tenella oocytes]. Berliner und Munchener tierarztliche Wochenschrift, 88(8), 144–148. [in German]
18. Hunko, O., & Fotina, T. (2022). Vyznachennia hostroi toksychnosti protyprotozoinoho preparatu «Avizuryl» [Determination of acute toxicity of antiprotozoal drug «Avizuril»]. Naukovyi visnyk LNU veterynarnoi medytsyny ta biotekhnolohii. Seriia: Veterynarni nauky, 24(106), 136-141. https://doi.org/10.32718/nvlvet10621. [in Ukrainian].
19. Jenkins, M. B., Bowman, D. D., & Ghiorse, W. C. (1998). Inactivation of Cryptosporidium parvum Oocysts by Ammonia. Applied and environmental microbiology, 64(2), 784–788. https://doi.org/10.1128/AEM.64.2.784-788.1998
20. Korich, D. G., Mead, J. R., Madore, M. S., Sinclair, N. A., & Sterling, C. R. (1990). Effects of ozone, chlorine dioxide, chlorine, and monochloramine on Cryptosporidium parvum oocyst viability. Applied and environmental microbiology, 56(5), 1423–1428. https://doi.org/10.1128/aem.56.5.1423-1428.1990
21. McDonnell, G., & Russell, A. D. (1999). Antiseptics and disinfectants: activity, action, and resistance. Clinical microbiology reviews, 12(1), 147–179. https://doi.org/10.1128/CMR.12.1.147
22. Noack, S., Chapman, H. D., & Selzer, P. M. (2019). Anticoccidial drugs of the livestock industry. Parasitology research, 118(7), 2009–2026. https://doi.org/10.1007/s00436-019-06343-5
23. Pavlásek I. (1984). Ucinek dezinfekcních prostredků na infekceschopnost oocyst Cryptosporidium sp [The effect of disinfectants on the infectivity of Cryptosporidium sp. oocysts]. Ceskoslovenska epidemiologie, mikrobiologie, imunologie, 33(2), 97–101. [in Czech]
24. Peek, H. W., & Landman, W. J. (2011). Coccidiosis in poultry: anticoccidial products, vaccines and other prevention strategies. The veterinary quarterly, 31(3), 143–161. https://doi.org/10.1080/01652176.2011.605247
25. Radičević, T., Janković, S., Stefanović, S., Nikolić, D., Đinović-Stojanović, J., & Spirić, D. (2017, September). Coccidiostats in unmedicated feedingstuffs for poultry. In IOP Conference Series: Earth and Environmental Science (Vol. 85, No. 1, p. 012080). IOP Publishing.
26. Rehman, T. U., Khan, M. N., Sajid, M. S., Abbas, R. Z., Arshad, M., Iqbal, Z., & Iqbal, A. (2011). Epidemiology of Eimeria and associated risk factors in cattle of district Toba Tek Singh, Pakistan. Parasitology research, 108(5), 1171–1177. https://doi.org/10.1007/s00436-010-2159-5
27. Weir, S. C., Pokorny, N. J., Carreno, R. A., Trevors, J. T., & Lee, H. (2002). Efficacy of common laboratory disinfectants on the infectivity of Cryptosporidium parvum oocysts in cell culture. Applied and environmental microbiology, 68(5), 2576–2579. https://doi.org/10.1128/AEM.68.5.2576-2579.2002
28. Williams, R.B. (1997). Laboratory tests of phenolic disinfectants as oocysticides against the chicken coccidium Eimeria tenella. The Veterinary record, 141(17), 447–448. https://doi.org/10.1136/vr.141.17.447
29. You, M.J. (2014). Suppression of Eimeria tenella sporulation by disinfectants. The Korean journal of parasitology, 52(4), 435–438. https://doi.org/10.3347/kjp.2014.52.4.435
30. Zaman, M.A., Iqbal, Z., Abbas, R.Z., & Khan, M.N. (2012). Anticoccidial activity of herbal complex in broiler chickens challenged with Eimeria tenella. Parasitology, 139(2), 237–243. https://doi.org/10.1017/S003118201100182X
ISSN 
ISSN 
