ПАТОЛОГІЯ СЕРЦЕВО-СУДИННОЇ СИСТЕМИ ІНДИКІВ

Григорій Анатолійович Зон; Людмила Борисівна Івановська; Ігор Дмитрович Майковський

doi:10.32782/bsnau.vet.2024.1.3

Григорій Анатолійович Зон https://orcid.org/0000-0001-8205-4149
Людмила Борисівна Івановська https://orcid.org/0000-0001-7406-0696
Ігор Дмитрович Майковський https://orcid.org/0009-0008-7803-3570

DOI: https://doi.org/10.32782/bsnau.vet.2024.1.3

Ключові слова: індики, технології промислового птахівництва, розрив аорти, латеризм, патологія серцево-судинної системи, патоморфологія нирок, хелати міді

Анотація

Робота присвячена актуальній проблемі промислового індиківництва, одному з аспектів патології серцево-судинної системи ̶ розривам артеріальних судин (латеризму) у індиків важкого кросу фінального періоду відгодівлі. В огляді літератури представлено вивчення цього питання в світовій практиці промислового індиківництва. Описані найвідоміші етіологічні фактори, які спричиняють патологію у індиків та напрямки профілактики захворювання. Метою роботи було провести патологоанатомічну та патоморфологічну оцінку проблемних ділянок індиків щодо виникнення латеризму за умов збалансованого раціону та згодовування хелатів міді, спрямованих на покращення морфологічного стану судин птиці. Патологоанатомічному дослідженню було піддано 67 трупів самців індиків, старших за 13 тижнів кросу Converter, що загинули від раптової смерті за випадків розривів судин. Оцінювали загальний стан птиці на день настання смерті, вік, стать, патологоанатомічні (основні та фонові) зміни, які призвели до загибелі, місце локалізації розриву судин. Відбирали патологічний матеріал для патогістологічних досліджень. Оцінювали раціон птиці щодо збалансованості за поживними інгредієнтами, вітамінами, макро – мікроелементами відповідно до віку, статі, кросу та періоду відгодівлі. В результаті досліджень встановлено, що не зважаючи на застосування хелатних сполук міді у самців індиків старших за 13 тижнів реєструються випадки раптової смерті внаслідок латеризму. Найуразливішим місцем щодо латеризму можуть бути ділянки відгалуження від грудочеревної аорти краніальної ниркової (a.renalis cranialis) та каудальної брижової артерій (a. mesenterica caudalis). Пошкоджень коронарних артерій, здатних спричинити крововиливи, в жодному з випадків серед досліджених трупів індиків кросу Converter не виявлено. Серед фонових захворювань за латеризму локальні або суцільні дистрофічні зміни в міокарді, а також застійні процеси виявляли в окремих судинах великого кола кровообігу, в печінці, легенях. Застійна гіперемія в судинах венозної системи призводила до дистрофічних та запальних процесів в їх оболонках та артеріальних судинах, з випотіванням рідини в навколосудинний простір, ушкодженням ендотелію, набряку еластичних та колагенові волокна середньої оболонки, на тлі активної проліферації макрофагів.

Посилання

1. Aziz, T.(2004). Rapture of the aorta. Word Poultry. 12:38 – 46.
2. Carlton, W.W. & Henderson, W. (1963). Cardiovascular lesions in experimental copper deficiency in chickens. Journal of Nutrition , 81: 200 -208.
3. Cheville, N.F. (1994). Extracellular substances, pigments, and crystals. In Ultrastructural Pathology, An Introduction to Interpretation (pp. 277 -283). Ames: Iowa State University Press.
4. Coulson, W.F., Linker, A. & Bottcher, A. (1969). Lathyrism in swine.Archives in Pathology, 87:411- 417.
5. Crespo, R. & Shivaprasad, H.L. (2003). Developmental, metabolic, and other noninfectious disorders. In Y.M. Saif (Ed.), Diseases of Poultry, 11th edn (pp. 1055 -1102). Ames: Iowa State Press.
6. Doane, F.W. & Anderson, N. (1987). Electron Microscopy and Diagnostic Virology. A Practical Guide and Atlas (pp.4-27). Cambridge: Cambridge University Press.
7. Environmental Protection Agency (1991). Determination of Metals in Fish Tissue by Inductively-Coupled Plasma Atomic Emission Spectro- metry Revision 2.1, method 200.11 (pp. 178 -209). Washington, DC: US Environmental Protection Agency, Office of Research and Development, Environmental Monitoring and Support Laboratory.
8. Galey, F.D., Slenning, B.D., Anderson, M.L., Breneman, P.C., Littlefield, E.S., Melton, L.A. & Tracy, M.L. (1990). Lead concentrations in blood and milk from periparturient dairy heifers seven months after an episode of acute lead toxicity. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation , 2 : 222 -226.
9. Graham, C.L.G. (1977). Copper levels in livers of turkeys with naturally occurring aortic rupture. Avian Diseases , 21 :113 -116.
10. Julian R.J.(1996) ed. C.Riddell [2nd. ed.].Cardiovascular system.Am. Assoc. Avian Pathologist, Kennett Squre,PA. Avian Histopatology. 10: 69-88.
11. Krista, L.,Waibel P., Shofner A. et al (1967). Natural Dissecting Aunerism (Aortic Repture)and blood Pressure in the Turkey. Nature,:1162-1163.doi.org/10`1038/2141162a 0
12. Krista, L.M., McDaniel, G.R., Mora, E.C., Patterson, R. & Whitesides,J.F. (1987). Histological evaluation of the vascular system for the severity of atherosclerosis in hyper and hypotensive male and female turkeys: Comparison between young and aged turkeys. Poultry Science , 66 :1033 -1044.
13. Krista, L.M. & McQuire, J.A. (1988). Atherosclerosis in coronary, aortic, and sciatic arteries from wild male turkeys (Meleagridis gallopava silvestris ). American Journal of Veterinary Research , 49 :1582 -1588.
14. McMurray, C.H. & Blanchflower, W.J. (1979). Application of a high- performance liquid chromatography fluorescence method for the rapid determination of alpha-tocopherol in the plasma of cattle and pigs and its comparison with direct fluorescence and high-performance liquid chromatography-ultraviolet detection methods. Journal of Chromatography, 178: 525-531.
15. Middleton, C.C. (1965). Naturally occurring atherosclerosis in broad- breasted bronze turkeys. In Comparative Atherosclerosis (pp. 59- 61). New York: Harper and Row.
16. Miller, K.W., Lorr, N.A. & Yang, C.S. (1984). Simultaneous determina- tion of plasma retinol, alpha-tocopherol, lycopene, alpha-carotene, and beta-carotene by high-performance liquid chromatography. Analytical Biochemistry,138 : 340 −345.
17. Mushabbar,S. & Lesch,M. (1997). Coronary artery aneurysm: a review.Progress in Cardiovascular Diseases, 40 :77 – 84.
18. Nickel, R., Schummer, A. & Seiferle, E. (1977). Circulatory sytem. In Anatomy of the domestic birds (pp. 90 -91). New York: Springer- Verlag.
19. O’Dell, B.L., Hardwick, B.C., Reynolds, G. & Savage, J.E. (1961). Connective tissue defect in the chick resulting from copper deficiency. Proceedings of Society for Experimental Biology and Medicine , 108 : 402 – 405.
20. O`Grady M.R. & O`Sullivan (2004).Dilated cardiomiopathy: An update. Vet. Clin. Nort. Am. Small anim. pract.V.34:1187 -1207.
21. Owles, J.P. (1984). Identification of monensin, narasin, salinomycin and lasalocid in pre-mixes and feeds by thinlayer chromatography. Analyst ,109 :1331-1333.
22. Peckham, M.C. (1984). Miscellaneous diseases and conditions. In M.S. Hofstad (Ed.). Diseases of Poultry, 8th edn (pp. 766-767). Ames: Iowa State University Press.
23. Pons, W.A., Jr. & Hoffpauir, C.L. (1957). Determination of free and total gossypol in mixed feeds containing cottonseed meals. Journal of Association of Official Agricultural Chemists , 40 , 1068 −1080.
24. Potter, K.A. & Besser, T.A. (1994). Cardiovascular lesions in Bovine Marfan Syndrome. Veterinary Pathology, 31 : 501 – 509.
25. Pritchard, W.R., Henderson, W. & Beall, C.W. (1958). Experimental production of dissecting aneurysm in turkeys. American Journal of Veterinary Research , 19 : 696-705.
26. Puls, R. (1994a). Copper. In Mineral Levels in Animal Health , 2nd edn (pp. 101-103). Clearbrook: Sherpa International.
27. Puls, R. (1994b). Zinc. In Mineral Levels in Animal Health , 2nd edn (pp. 294 -296). Clearbrook: Sherpa International.
28. Robinson, W.F. & Maxie, M.G. (1993). The cardiovascular system. In K.V.F. Jubb (Ed.), Pathology of Domestic animals , 4th edn (pp. 1-100). New York: Academic Press.
29. Rottinghaus, G.E., Olesen, B. & Osweiler, G.D. (1982). Rapid screening method for aflatoxin B, zearalenone, ochratoxin A, T-2 toxin, diacetoxyscirpenol and vomitoxin. Proceedings of the 25th AnnualMeeting of the American Association of Veterinary Laboratory Diagnositicians , 25 :477 – 484.
30. Savage, J.E., Bird, D.W., Reynolds, G. & O’Dell, B.L (1966). Comparison of copper deficiency and lathyrism in turkey poults. Journal of Nutrition, 88: 15-25.
31. Shivaprasad H.L., Crespo R. & Pushner B. (2004). Coronary artery ruptyre in mail commercial turkeys. Avian Patology.V.33:226-232.
32. Senne, D.A (1998). Virus propagation in embryonating eggs. In D.E. Swayne (Ed.), A Laboratory Manual for the Isolation and identification of Avian Pathogens, 4th edn (pp. 235-240). Kennett Square, PA: American Association of Avian Pathologists.
33. Simpson, C.F., Boucek, R.J.& Noble,N.L. (1980). Similarity of aortic pathology in Marfan’s syndrome, copper deficiency in chicks, and b- aminoproprionitrile toxicity in turkeys. Experimental Molecular Pathology, 32 : 81- 90.
34. Thayer, S.G. & Beard, C.W. (1998). Serologic procedures. In D.E. Swayne (Ed.), A Laboratory Manual for the Isolation and Identificaion of Avian Pathogens, 4th edn (pp. 255-266). Kennett Square, PA: American Association of Avian Pathologists.
35. Tracy, M.L. & Moeller, G. (1990). Continuous flow vapor generation for inductively coupled argon plasma spectrometric analysis. Part 1: selenium. Journal of Association of Official Analytical Chemists , 3: 404 – 410.
36. van der Linde-Sipman, J.S., Kroneman, J., Meulenaar, H. & Vos, J.H. (1985). Necrosis and rupture of the aorta and pulmonary trunk in four horses. Veterinary Pathology, 22 :51-53.
37. Vanhooser, S.L., Stair, E., Edwards, W.C., Labor, M.R. & Carter, D. (1994). Aortic rupture in ostrich associated with copper deficiency. Veterinary and Human Toxicology, 36 : 225-226.
38. Vink-Nooteboom, M., Schoemaker, N.J., Kik, M.L.J., Lumeij, J.T. & Wolvekamp, W.Th.C. (1998). Clinical diagnosis of aneurysm of the right coronary artery in a white cockatoo (Cacatua alba ). Journal of Small Animal Practice , 39 : 533 -537.
39. Waibel, P.E. & Pomeroy, B.S. (1958). Studies on the production of aortic hemorrhage in growing turkeys with Beta-aminoproprionitirile. Poultry Science , 37: 934 – 938.
40. Welz, B. & Melcher, M. (1985). Decomposition of marine biological tissues for determination of arsenic, selenium and mercury using hydride generation and cold-vapor atomic absorption spectrometers. Analytical Chemistry, 57: 427 – 431.