Зміни показників запліднюваності за вакцинації корів проти сибірки

Ключові слова: показники запліднюваності, штучне запліднення, вакцинація проти сибірки, економічні збитки.

Анотація

Показник запліднюваності є одним з маркерів ефективність галузі тваринництва, проте благополучному утворенню і закріпленню зиготи в слизовій оболонці матки можуть перешкоджати не лише різні запальні процеси, а й імунологічні реакції поствакцинального комплексу.

Попередні спостереження за станом запліднюваності корів в господарстві вказували на суттєве зниження цього показника як раз після проведення вакцинації проти сибірки. Результати досліджень, наведені в статті показують достовірне зменшення  показника запліднюваності. На нашу думку, це пов’язане з імунологічними процесами в організмі провакцинованих корів, яких осіменяли. Тобто, стимульована під час вакцинації імунна система не здатна гальмувати свою роботу в окремо взятих статевих шляхах, тому й заважає прикріпленню успішно утвореної при заплідненні зиготи до слизової матки, що в підсумку закінчується безпліддям і настанням повторної охоти.

Отримані результати дозволяють стверджувати, що вакцинація тварин проти сибірки і особливо період активного формування поствакцинального специфічного імунітету знижують показники відтворення у корів: показники запліднюваності знижувалися на 16,2%  протягом першого тижня після вакцинації та на 50% протягом другого у порівнянні з показниками тварин, які осіменялися до початку вакцинації

З’ясовано, що у корів, яких осіменяли під час імунологічного навантаження, відмічене збільшення тривалості термінів неплідності – відповідно на 12,7%  та 38,6%.

Економічні розрахунки показали, що збитки від недоотримання телят в групі корів, осіменених безпосередньо після вакцинації, були в 2,7 разів більші, а в групі корів, осіменених на другому тижні після вакцинації, – відповідно в 3,5 рази вищі, ніж у корів, яких осіменяли до вакцинації.  Збитки від недоотримання молока в цих групах збільшилось відповідно на 7,6 % та 38,4%.

Посилання

1. Adone, R., Sali, M., Francia, M., Iatarola, M., Donatiello, A., Fasanella, A. (2016). Development of a Sterne-Based Complement Fixation Test to Monitor the Humoral Response Induced by Anthrax Vaccines. Frontiers in Microbiology, 7, 19. DOI=10.3389/fmicb.2016.00019. Available from: https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fmicb.2016.00019 [accessed Sep 23 2020].
2. Archana, SS, Selvaraju, S, Binsila, BK, Arangasamy, A, Krawetz, SA. (2019). Immune regulatory molecules as modifiers of semen and fertility: A review. Mol Reprod Dev., 86: 1485– 1504. https://doi.org/10.1002/mrd.23263
3. Archana, SS, Selvaraju, S, Binsila, BK, Arangasamy, A, Krawetz, SA. Immune regulatory molecules as modifiers of semen and fertility: A review. Mol Reprod Dev. 2019; 86: 1485– 1504. https://doi.org/10.1002/mrd.23263
4. Arthur M. Friedlander, John D. Grabenstein, Philip S. Brachman, Stanley A. Plotkin, Walter A. Orenstein, Paul A. Offit, Kathryn M. Edwards. (2018). Plotkin's Vaccines (Seventh Edition), Anthrax Vaccines, Elsevier, 134-148. https://doi.org/10.1016/B978-0-323-35761-6.00011-0.
5. Bassuino, D.M., Siqueira, F.M., Konradt, G., Vielmo, A., Rolim, V.M., Gonçalves M.A., Cibulski S.P., Snel, G., MayerF.Q., Castagna de Vargas A. Driemeier, D. Pavarini, S.P. (2020) Bovine abortion by a vaccine strain of Bacillus anthracis Ciência Rural 50(12). DOI: 10.1590/0103-8478cr20200264. Available from: https://www.researchgate.net/publication/344324108_Bovine_abortion_by_a_vaccine_strain_of_Bacillus_anthracis [accessed Oct 2 2020
6. Chabot, D.J., Joyce, J., Caulfield, M., Cook, J., Hepler, R., Wang, Su, Vietri, N. J., Ruthel, G., Shoop, W., Pitt, L., Leffel, E., Ribot, W., Friedlander, A. M. (2012). Efficacy of a capsule conjugate vaccine against inhalational anthrax in rabbits and monkeys. Vaccine, 30, 5, 846-852. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2011.12.010.
7. Fasanella, A., Tonello, F., Garofolo, G., Muraro, L., Carattoli, A., Adone, R., Montecucco C. (2008). Protective activity and immunogenicity of two recombinant anthrax vaccines for veterinary use. Vaccine 26(45), 5684-5688. DOI:10.1016/j.vaccine.2008.08.026
8. Firoved, A.M., Miller, G.F., Moayeri, M., Kakkar, R., Shen, Y., Wiggins, J.F., McNally, E.M., Tang, W.-J., Leppla, S.H. (2005). Bacillus anthracis edema toxin causes extensive tissue lesions and rapid lethality in mice. American Journal of Pathology, 167, 5, 1309-1320.
9. Franco, C., Lewis, E., Morseth, S., Simon, L., Waytes, A.T. (2009). Reproductive toxicity of BioThrax® in rabbits. Birth Defects Research Part B - Developmental and Reproductive Toxicology, 86, 5, 370-376
10. Hansen, P. J. (2007). Regulation of immune cells in the uterus during pregnancy in ruminants. Journal of Animal Science, 85, E30–E31.
11. Hansen, P. J. (2007). Regulation of immune cells in the uterus during pregnancy in ruminants. Journal of Animal Science, 85, E30–E31.
12. Ian Tizard (2020) Vaccine Failure and Other Adverse Events in Animals. At https://www.merckvetmanual.com/pharmacology/vaccines-and-immunotherapy/vaccine-failure-and-other-adverse-events-in-animals
13. Ibrahim, L. A., Rizo, J. A., Fontes, P. L. P., Lamb, G. C., & Bromfield, J. J. (2018). Seminal plasma modulates expression of endometrial inflammatory meditators in the bovine. Biology of Reproduction, 100, 660–671.
14. Ionin, B., Hopkins, R.J., Pleune, B., Sivko, G.S., Reid, F.M., Clement, K.H., Rudge Jr., T.L., Stark, G.V., Innes, A., Sari, S., Guina, T., Howard, C., Smith, J., Swoboda, M.L., Vert-Wong, E., Johnson, V., Nabors, G.S., Skiadopoulos, M.H. (2013). Evaluation of immunogenicity and efficacy of anthrax vaccine adsorbed for postexposure prophylaxis. Clinical and Vaccine Immunology, 20, 7, 1016-1026
15. Kern, J., Schneewind, O. (2010). BslA, the S-layer adhesin of B. anthracis, is a virulence factor for anthrax pathogenesis. Molecular Microbiology, 75, 2, 324-332
16. Liu, S., Moayeri, M., Leppla, S.H. (2014). Anthrax lethal and edema toxins in anthrax pathogenesis. Trends in Microbiology, 22, 6, 317-325
17. Manuilov AV (2004) Vlyianye vaktsynoprofylaktyky ynfektsyonnыkh boleznei na vosproyzvodytelnuiu funktsyiu korov. [Influence of vaccine prophylaxis of infectious diseases on reproductive function of cows]. Dyss kand vet nauk [PhD thesises], 16. [in Russian]
18. Marey, M. A., Liu, J., Kowsar, R., Haneda, S., Matsui, M., Sasaki, M., … Miyamoto, A. (2014). Bovine oviduct epithelial cells downregulate phagocytosis of sperm by neutrophils: Prostaglandin E2 as a major physiological regulator. Reproduction, 147, 211–219.
19. Marey, M. A., Yousef, M. S., Kowsar, R., Hambruch, N., Shimizu, T., Pfarrer, C., & Miyamoto, A. (2016). Local immune system in oviduct physiology and pathophysiology: Attack or tolerance, Domestic Animal Endocrinology, 56, S204–S211.
20. Martin E. Hugh-Jones (2015). Overview of Anthrax. https://www.merckvetmanual.com/generalized-conditions/anthrax/overview-of-anthrax
21. Oscherwitz, J., Quinn, C.P., Cease, K.B. (2015). Anthrax vaccine recipients lack antibody against the loop neutralizing determinant: A protective neutralizing epitope from Bacillus anthracis protective antigen. Vaccine, 33, 20, 2342-2346
22. Quinn CP, Sabourin CL, Schiffer JM, Niemuth NA, Semenova VA, Li H, Rudge TL, Brys AM, Mittler RS, Ibegbu CC, Wrammert J, Ahmed R, Parker SD, Babcock J, Keitel W, Poland GA, Keyserling HL, El Sahly H, Jacobson RM, Marano N, Plikaytis BD, Wright JG. (2016). Humoral and Cell-Mediated Immune Responses to Alternate Booster Schedules of Anthrax Vaccine Adsorbed in Humans. Clin Vaccine Immunol., 23(4), 326-338. doi: 10.1128/CVI.00696-15.
23. Robert J. Hopkins, Nancy F. Daczkowski, Paulina E. Kaptur, Derek Muse, Eric Sheldon, Craig LaForce, Suha Sari, Thomas L. Rudge, Edward Bernton. (2013). Randomized, double-blind, placebo-controlled, safety and immunogenicity study of 4 formulations of Anthrax Vaccine Adsorbed plus CPG 7909 (AV7909) in healthy adult volunteers. Vaccine, 31, 30, 3051-3058, https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2013.04.063.
24. Rublenko, I.O. (2018). Sybirka u tvaryn. [Anthrax in animals]. Nauk. visnyk Lviv. nats. un-tu vet. medytsyny ta biotekhnolohii im. S.H. Gzhytskoho, [Science. Bulletin of Lviv. nat. un-tu vet. of Medicine and Biotechnology S.G. Gzhytsky], 20 (83), 13–16.
25. Rublenko, I.O. (2018). Vyznachennia stupenia zalyshkovoi virulentnosti i reaktohennosti shtamu Bac. anthracis UA–07. [Determination of the degree of residual virulence and reactogenicity of strain Bac. anthracis UA – 07] Nauk.-tekhn. biuleten In-tu biolohii tvaryn i DNDKI vetpreparativ ta kormovykh dobavok [Scientific and technical Bulletin of the Institute of Animal Biology and DNDKI veterinary drugs and feed additives], 19 (1), 102–108.
26. Rublenko, І.O.and Skrypnyk, V.G. (2016). Features of specific immunity formation in cattle after vaccination against animals anthrax with vaccine of UA–07 “Antravak” strain”. Bioresources and nature management: scientific-theoretical. Journal of NULES of Ukraine, 8. (№5–6), 67–71.
27. Sandra I. Sulsky, Rose S. Luippold, Patrick Garman, Hayley Hughes, Paul J. Amoroso, (2011). Risk of disability for US army personnel vaccinated against anthrax, 1998–2005, Vaccine, 29, 35, 6035-6041. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2011.06.028.
28. Skoble, J., Beaber, J.W., YiGao, Lovchik, J.A., Sower, L.E., Liu, W., Luckett, W., Peterson, J. W., Calendar, R., Portnoy, D. A., Lyons, C. R. and Dubensky, T.W. Jr. (2009).Killed but Metabolically Active Bacillus anthracis Vaccines Induce Broad and Protective Immunity against Anthrax. Infection and Immunity, 77(4), 1649-1663. DOI: 10.1128/IAI.00530-08. Available from: https://www.researchgate.net/publication/23939046_Killed_but_Metabolically_Active_Bacillus_anthracis_Vaccines_Induce_Broad_and_Protective_Immunity_against_Anthrax [accessed Sep 23 2020].
29. Spickler, A.R. (2017). The center of food security and public health: Disease Information. Anthrax 2017 At https://www.cfsph.iastate.edu/diseaseinfo/disease/?disease=anthrax&lang=en
30. Tracy Pondo, Charles E. Rose, Stacey W. Martin, Wendy A. Keitel, Harry L. Keyserling, Janiine Babcock, Scott Parker, Robert M. Jacobson, Gregory A. Poland, Michael M. McNeil (2014). Evaluation of sex, race, body mass index and pre-vaccination serum progesterone levels and post-vaccination serum anti-anthrax protective immunoglobulin G on injection site adverse events following anthrax vaccine adsorbed (AVA) in the CDC AVA human clinical trial. Vaccine, 32, 28, 3548-3554, https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2014.04.025.
31. William H. Catherino, Andrew Levi, Tzu-Cheg Kao, Mark P. Leondires, Jeffrey McKeeby, James H. Segars. (2005). Anthrax vaccine does not affect semen parameters, embryo quality, or pregnancy outcome in couples with a vaccinated male military service member. Fertility and Sterility, 83, 2, 480-483. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2004.07.965.
32. Zhang, Y., Martin, S.W., Rose Jr., C.E., Biagini, R.E., Franzke, L.H., Smith, J.P., Sammons, D.L., Robertson, S.A, McNeil, M.M.( 2008). Evaluation of body mass index, pre-vaccination serum progesterone levels and anti-anthrax protective antigen immunoglobulin G on injection site adverse events following anthrax vaccination in women. Pharmacoepidemiology and Drug Safety, 17, 11, 1060-1067
Опубліковано
2020-12-28
Як цитувати
Титух , Я., Байдевлятов, Ю., Ребенко, Г., & Мусієнко, Ю. (2020). Зміни показників запліднюваності за вакцинації корів проти сибірки. Вісник Сумського національного аграрного університету. Серія: Ветеринарна медицина, (4 (51), 3-10. https://doi.org/10.32845/bsnau.vet.2020.4.1