Сироватка кордової крові поєднано з актовегіном за корекції відтворної функці корів

Ірина  Бондаренко

doi:10.32845/bsnau.vet.2020.4.6

Ірина Бондаренко Сумський національний аграрний університет https://orcid.org/0000-0002-1019-3446

DOI: https://doi.org/10.32845/bsnau.vet.2020.4.6

Ключові слова: корови, сироватка кордової крові, актовегін, корекція відтворної функції

Анотація

Дослідженнями доведена роль сироватки кордової крові та препарату «Актовегін» в процесах відновлення постморбідного ендометрія за рахунок вмісту репродуктивних гормонів, цитокінів, проферментів, ферментів, рецепторів, адаптогенів, факторів росту, імунорегуляторних агентів, транспортних білків та інших мультипотентних компонентів. Вищезгаданий ефект від застосування кріоконсервованої сироватки кордової крові досягається й при тривалому її зберіганні: -18-20◦С, оскільки низька температура забезпечує збереження біологічно-активних сполук в нативному стані й фізіологічних співвідношеннях.

Досліджено дію сироватки кордової крові та препарату «Актовегін» на процес ремодуляції морфо-функціональних властивостей ендометрію за постморбідного стану за рахунок нейротрофічного впливу, модуляції та корекції процесів неоангіогенезу й інгібуванні тканин ендометрію. Результати досліджень показали, що достовірно меншою на 14,4 % (р<0,001) порівняно з показником групи тварин де препарати не вводились, була кількість днів від корекції відтворної функції до прояву стадії збудження при застосуванні 10 мл. сироватки КК з актовегіном (3,86±0,36 та 14,38±2,1, відповідно). Кількість корів що отелилися після застосуванні 10 мл. сироватки КК п/ш з актовегіном 10мл (400 мг) в/м (93,75%) була більшою на 53.3% порівняно з тваринами де очікувався спонтанний прояв охоти.

Таким чином, застосування сироватки кордової крові та поєднане застосування сироватки КК і препарату «Актовегін» дозволяє відновити морфологічну структуру ендометрія та відновити баланс між факторами активаторами та інгібіторами ангіогенезу, що обумовлює оптимальні умови для формування материнської частини плаценти.

Посилання

1. Berry, DP, Wall, E, Pryce, JE. (2014). Genetics and genomics of reproductive performance in dairy and beef cattle. Animal, 8(s1):105–121. doi: 10.1017/S1751731114000743.
2. Morotti, F, Sanches, BV PJHF, Basso, AC, Siqueira, ER, Lisboa, LA, Seneda, MM. (2014). Pregnancy rate and birth rate of calves from a large-scale IVF program using reverse-sorted semen in Bos indicus, Bos indicus-taurus, and Bos taurus cattle. Theriogenology, 81:696–701. doi: 10.1016/j.theriogenology.2013.12.002.
3. Forde, N, Beltman, ME, Lonergan, P, Diskin, M, Roche, JF, Crowe, MA. (2011). Oestrous cycles in Bos Taurus cattle. Anim Reprod Sci., 124, 163–169. doi: 10.1016/j.anireprosci.2010.08.025. .
4 Mulligan, FJ, O'Grady, L, Rice, DA, Doherty, ML. (2006). A herd health approach to dairy cow nutrition and production diseases of the transition cow. Anim Reprod Sci., 96, 331–353. doi: 10.1016/j.anireprosci.2006.08.011.
5. Diskin, MG, Parr, MH, Morris, DG. (2012). Embryo death in cattle: an update. Reprod Fert Develop., 24, 244–251. doi: 10.1071/RD11914..
6. Opsomer, G, Gröhn, YT, Hertl, J, Deluycker, H, Coryn, M, de Kruif, A. (2000). Risk factors for postpartum ovarian dysfunction in high producing dairy cows in Belgium: a field study. Theriogenology, 53, 841–857. doi: 10.1016/S0093-691X(00)00234-X..
7. Leroy, JLMR, Opsomer, G, Van Soom, A, Goovaerts, IGF, Bols, PEJ. (2008). The importance of negative energy balance and altered corpus luteum function to the reduction of oocyte and embryo quality in high yielding dairy cows. Part I – the importance of negative energy balance and altered corpus luteum function to the reduction of oocyte and embryo quality in high-yielding dairy cows. Reprod Domest Anim., 43, 612–622. doi: 10.1111/j.1439-0531.2007.00960.x.
8. LeBlanc, S. (2010). Monitoring metabolic health of dairy cattle in the transition period. J. Reprod Dev., 56, 29–35. doi: 10.1262/jrd.1056S29.
9. Garnswortthy, PC, Sinclair, KD, Webb, R. (2008). Integration of physiological mechanisms that influence fertility in dairy cows. Animal., 2, 1144–1152. doi: 10.1017/S1751731108002358.
10. Krohn, CC, Munksgaard, L, Jonasen, B. (1992). Behavior of dairy cows kept in intensive (loose housing pasture) or intensive (tie stall) environments. 1. Experimental procedure, facilities, time budgets - Diurnal and seasonal conditions. Appl Anim Behav Sci., 34, 37–47. doi: 10.1016/S0168-1591(05)80055-3.
11. Hernandez-Mendo O, Von Keyserlingk MAG, Veira DM, Weary DM. (2007). Effects of pasture on lameness in dairy cows. J Dairy Sci., 90, 1209–1214. doi: 10.3168/jds.S0022-0302(07)71608-9.
13. Willms, WD, Kenzie, OR, McAllister, TA, Colwell, D, Veira, D, Wilmshurst JF, Entz T, Olson ME. (2002). Effects of water quality on cattle performance. J Range Manage, 2;, 5:452–460. doi: 10.2307/4003222.
14. Irina Bondarenko, Andrei Lazorenko, Apollinariy Krajewsky (2019). Structural And Morphological Changes Of Endometrium Related To Ovary Cycle And Condition Of Genital Function Of Cows. Visnyk Sumskoho NAU [Bulletin of Sumy NAU], 3 (46), 9-22.
15. Burow, E, Thomsen, PT, Sørensen, JT, Rousing, T. 92011). The effect of grazing on cow mortality in Danish dairy herds. Prev Vet Med., 100, 237–241. doi: 10.1016/j.prevetmed.2011.04.001.
16. Keil, NM, Wiederkehr, TU, Friedli, K, Wechsler, B. (2006). Effects of frequency and duration of outdoor exercise on the prevalence of hock lesions in tied Swiss dairy cows. Prev Vet Med., 74, 142–153. doi: 10.1016/j.prevetmed.2005.11.005.
17. Ostojić-Andrić, D, Hristov, S, Novaković, Z, Pantelić, V, Petrović, MM, Zlatanović, Z, Nikšić, D. (2011). Dairy cows welfare quality in loose vs tie housing system. Biotechnol Anim Husb., 27, 975–984. doi: 10.2298/BAH1103975O.
18. Oikonomopoulos, A, van Deen ,WK, Manansala, AR, Lacey, PN, Tomakili ,TA, Ziman, A, Hommes, DW. (2015). Optimization of human mesenchymal stem cell manufacturing: the effects of animal/xeno-free media. Sci. Rep. 5. doi: 10.1038/srep16570.
19. Stoltz, JF, de Isla, N, Li YP, Bensoussan, D, Zhang, L, Huselstein, C, Chen, Y, Decot, V, Magdalou, J, Li N, Reppel, L, He Y.(2015). Stem cells and regenerative medicine: myth or reality of the 21th century. Stem Cells Int. ID 734731. doi: 10.1155/2015/734731.
20. Swamynathan, P, Venugopal, P, Kannan, S, Thej, C, Kolkundar, U, Bhagwat, S, Ta M, Majumdar, AS, Balasubramanian, S. (2014). Are serum-free and xeno-free culture conditions ideal for large scale clinical grade expansion of Wharton’s jelly derived mesenchymal stem cells? A comparative study. Stem Cell Res. Ther., 5(4), 88. doi: 10.1186/scrt477.
21. Díez, JM, Bauman, E, Gajardo, R, Jorquera, JI. (2015). Culture of human mesenchymal stem cells using a candidate pharmaceutical grade xeno-free cell culture supplement derived from industrial human plasma pools. Stem Cell Res. Ther., 6. 28: doi: 10.1186/s13287-015-0016-2.
22. Castrén, E, Sillat, T, Oja, S, Noro, A, Laitinen, A, Konttinen, YT, Lehenkari, P, Hukkanen, M, Korhonen, M. (2015). Osteogenic differentiation of mesenchymal stromal cells in two-dimensional and three-dimensional cultures without animal serum. Stem Cell Res. Ther., 6, 167. doi: 10.1186/s13287-015-0162-6.