ВИЗНАЧЕННЯ ВПЛИВУ ЗБУДНИКІВ МАСТИТУ НА СКЛАД МОЛОКА

Ярослав Вікторович Титух

doi:10.32845/bsnau.vet.2021.2.5

Ярослав Вікторович Титух Сумський національний аграрний університет http://orcid.org/0000-0002-2504-0928

DOI: https://doi.org/10.32845/bsnau.vet.2021.2.5

Ключові слова: корови, мастит, соматичні клітини, збудники субклінічного маститу, лактація

Анотація

Традиційно ідентифікація і діагностика мікоплазм проводилися за допомогою мікробних культур. Зовсім недавно використання полімеразної ланцюгової реакції запропоновано для виявлення мікоплазм з молока великої рогатої худоби. Полімеразна ланцюгова реакція має більш високу ефективність, специфічність і чутливість для лабораторної діагностики в порівнянні з традиційними методами, заснованими на мікробіологічних дослідженнях. Дослідження проводили ТОВ «Агрофірма Лан», Сумська обл., Сумський р-н, с. Кіндратівка. Процедури поводження з тваринами в рамках дослідження були затверджені Комітетом з етики Сумського національного аграрного університету (затвердження №: 2017/01). Експерименти виконувались на коровах голштинської породи 1-5 лактації. Загалом було досліджено 200 голів. Захворювання на мастит визначали за допомогою каліфорнійського тесту та визначення кількості соматичних клітин у молоці. Проби молока для дослідження збирали під час ранкового доїння з кожної чверті вимені щотижня. Всі дослідження експерименти виконувались згідно рекомендацій та норм. Також у молоці мікробіологічними методами визначали мікроорганізми-збудники субклінічного маститу. Сортність молока за кМАФАнМ визначали згідно з ДСТУ 7357, ДСТУ 7089, ДСТУ ISO 4833, ДСТУ IDF 100B та соматичних клітин згідно з ДСТУ ISO13366-1, ДСТУ ISO13366-2, ДСТУ 7672. Крім того, були проведені молекулярно-генетичні дослідження біологічного матеріалу (молоко) від корів у ПЛР. Дослідженнями було встановлено, що кількість соматичних клітин (КСК) у молоці корів 1 дослідної групи було більше на 1265 %, кількість мезофільних аеробних і факультативно-анаеробних мікроорганізмів (кМАФАнМ) було більше на 31 %, порівняно до здорових тварин у контролі. Також у корів 1 дослідної групи шляхом проведення ПЛР у молоці була виявлена Mycoplasma spp. У другій дослідній групі, де був виділений Staphylococcus spp.у молоці, КСК було вище на 18,5% та кМАФАнМ – на 1010 %. У корів 3 дослідної групи основний патоген у молоці був виділений E. coli . При цьому КСК було вище на 24 %, а кМАФАнМ – на 1108 %, порівняно до здорових тварин. За результатами проведених досліджень було встановлено, що виділені ізоляти мікроорганізмів проявляли чутливість до пеніцилінових, аміноглікозидів та цефалоспоринофих груп антибактеріальних препаратів.

Посилання

1. Gomes, F., & Henriques, M. (2016). Control of Bovine Mastitis: Old and Recent Therapeutic Approaches. Current microbiology, 72(4), 377–382. https://doi.org/10.1007/s00284-015-0958-8
2. Sinha, M. K., Thombare, N. N., & Mondal, B. (2014). Subclinical mastitis in dairy animals: incidence, economics, and predisposing factors. TheScientificWorldJournal, 2014, 523984. https://doi.org/10.1155/2014/523984
3. Das, D, Panda, S.K., Jena, B., Sahoo, A.K. (2018). Economic impact of subclinical and clinical mastitis in Odisha, India. IntJCurrMicrobiolAppSci. 7(03):3651–3654. https://www.ijcmas.com/7-3-2018/D.%20Das2,%20et%20al.pdf
4. Abebe, R., Hatiya, H., Abera, M., Megersa, B., & Asmare, K. (2016). Bovine mastitis: prevalence, risk factors and isolation of Staphylococcus aureus in dairy herds at Hawassa milk shed, South Ethiopia. BMC veterinary research, 12(1), 270. https://doi.org/10.1186/s12917-016-0905-3
5. Romero, J., Benavides, E., & Meza, C. (2018). Assessing Financial Impacts of Subclinical Mastitis on Colombian Dairy Farms. Frontiers in veterinary science, 5, 273. https://doi.org/10.3389/fvets.2018.00273
6. Kalińska, A., Jaworski, S., Wierzbicki, M., & Gołębiewski, M. (2019). Silver and Copper Nanoparticles-An Alternative in Future Mastitis Treatment and Prevention?. International journal of molecular sciences, 20(7), 1672. https://doi.org/10.3390/ijms20071672
7. Manso-Silván, L., Dupuy, V., Lysnyansky, I., Ozdemir, U., & Thiaucourt, F. (2012). Phylogeny and molecular typing of Mycoplasma agalactiae and Mycoplasma bovis by multilocus sequencing. Veterinary microbiology, 161(1-2), 104–112. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2012.07.015
8. Horwood, P. F., Schibrowski, M. I., Fowler, E. V., Gibson, J. S., Barnes, T. S., & Mahony, T. J. (2014). Is Mycoplasma bovis a missing component of the bovine respiratory disease complex in Australia?. Australian veterinary journal, 92(6), 185–191. https://doi.org/10.1111/avj.12184
9. Fox L. K. (2012). Mycoplasma mastitis: causes, transmission, and control. The Veterinary clinics of North America. Food animal practice, 28(2), 225–237. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2012.03.007
10. Al-Farha, A. A., Hemmatzadeh, F., Khazandi, M., Hoare, A., & Petrovski, K. (2017). Evaluation of effects of Mycoplasma mastitis on milk composition in dairy cattle from South Australia. BMC veterinary research, 13(1), 351. https://doi.org/10.1186/s12917-017-1274-2
11. Parker, A. M., Sheehy, P. A., Hazelton, M. S., Bosward, K. L., & House, J. K. (2018). A review of mycoplasma diagnostics in cattle. Journal of veterinary internal medicine, 32(3), 1241–1252. https://doi.org/10.1111/jvim.15135
12. Yair, Y., Borovok, I., Mikula, I., Falk, R., Fox, L. K., Gophna, U., & Lysnyansky, I. (2020). Genomics-based epidemiology of bovine Mycoplasma bovis strains in Israel. BMC genomics, 21(1), 70. https://doi.org/10.1186/s12864-020-6460-0
13. Wisselink, H. J., Smid, B., Plater, J., Ridley, A., Andersson, A. M., Aspán, A., Pohjanvirta, T., Vähänikkilä, N., Larsen, H., Høgberg, J., Colin, A., & Tardy, F. (2019). A European interlaboratory trial to evaluate the performance of different PCR methods for Mycoplasma bovis diagnosis. BMC veterinary research, 15(1), 86. https://doi.org/10.1186/s12917-019-1819-7
14. Deng, Z., Hogeveen, H., Lam, T., van der Tol, R., & Koop, G. (2020). Performance of Online Somatic Cell Count Estimation in Automatic Milking Systems. Frontiers in veterinary science, 7, 221. https://doi.org/10.3389/fvets.2020.00221
15. Kandeel, S. A., Morin, D. E., Calloway, C. D., & Constable, P. D. (2018). Association of California Mastitis Test Scores with Intramammary Infection Status in Lactating Dairy Cows Admitted to a Veterinary Teaching Hospital. Journal of veterinary internal medicine, 32(1), 497–505. https://doi.org/10.1111/jvim.14876
16. Bhulto, A.L., Murry, R.D., Woldehiwet, Z (2012): California Mastitis Test scores as indicators of subclinical intramammary infections at the end of lactation in dairy cows. Res Vet Sci, 92, 13-17.
17. Prescott, S.C., Breed, R.S. (2010): The determination of the number of body cells in milk by a direct method. American J Pub Hyg, 20, 662-640.
18. Haapala, V., Pohjanvirta, T., Vähänikkilä, N., Halkilahti, J., Simonen, H., Pelkonen, S., Soveri, T., Simojoki, H., & Autio, T. (2018). Semen as a source of Mycoplasma bovis mastitis in dairy herds. Veterinary microbiology, 216, 60–66. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2018.02.005
19. Hazelton, M. S., Morton, J. M., Parker, A. M., Sheehy, P. A., Bosward, K. L., Malmo, J., & House, J. K. (2020). Whole dairy herd sampling to detect subclinical intramammary Mycoplasma bovis infection after clinical mastitis outbreaks. Veterinary microbiology, 244, 108662. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2020.108662.
20. Aebi, M., van den Borne, B. H., Raemy, A., Steiner, A., Pilo, P., & Bodmer, M. (2015). Mycoplasma bovis infections in Swiss dairy cattle: a clinical investigation. Acta veterinaria Scandinavica, 57(1), 10. https://doi.org/10.1186/s13028-015-0099-x
21. Ashraf, A., & Imran, M. (2020). Causes, types, etiological agents, prevalence, diagnosis, treatment, prevention, effects on human health and future aspects of bovine mastitis. Animal health research reviews, 21(1), 36–49. https://doi.org/10.1017/S1466252319000094
22. Côté-Gravel, J., & Malouin, F. (2019). Symposium review: Features of Staphylococcus aureus mastitis pathogenesis that guide vaccine development strategies. Journal of dairy science, 102(5), 4727–4740. https://doi.org/10.3168/jds.2018-15272
23. Babra, C., Tiwari, J. G., Pier, G., Thein, T. H., Sunagar, R., Sundareshan, S., Isloor, S., Hegde, N. R., de Wet, S., Deighton, M., Gibson, J., Costantino, P., Wetherall, J., & Mukkur, T. (2013). The persistence of biofilm-associated antibiotic resistance of Staphylococcus aureus isolated from clinical bovine mastitis cases in Australia. Folia microbiologica, 58(6), 469–474. https://doi.org/10.1007/s12223-013-0232-z
24. Bradley, A. J., Breen, J. E., Payne, B., White, V., & Green, M. J. (2015). An investigation of the efficacy of a polyvalent mastitis vaccine using different vaccination regimens under field conditions in the United Kingdom. Journal of dairy science, 98(3), 1706–1720. https://doi.org/10.3168/jds.2014-8332
25. Collado, R., Prenafeta, A., González-González, L., Pérez-Pons, J. A., & Sitjà, M. (2016). Probing vaccine antigens against bovine mastitis caused by Streptococcus uberis. Vaccine, 34(33), 3848–3854. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2016.05.044
26. Klaas, I. C., & Zadoks, R. N. (2018). An update on environmental mastitis: Challenging perceptions. Transboundary and emerging diseases, 65 Suppl 1, 166–185. https://doi.org/10.1111/tbed.12704
27. Ruegg P. L. (2017). A 100-Year Review: Mastitis detection, management, and prevention. Journal of dairy science, 100(12), 10381–10397. https://doi.org/10.3168/jds.2017-13023
28. Aghamohammadi, M., Haine, D., Kelton, D. F., Barkema, H. W., Hogeveen, H., Keefe, G. P., & Dufour, S. (2018). Herd-Level Mastitis-Associated Costs on Canadian Dairy Farms. Frontiers in veterinary science, 5, 100. https://doi.org/10.3389/fvets.2018.00100
29. Hadrich, J. C., Wolf, C. A., Lombard, J., & Dolak, T. M. (2018). Estimating milk yield and value losses from increased somatic cell count on US dairy farms. Journal of dairy science, 101(4), 3588–3596. https://doi.org/10.3168/jds.2017-13840
30. Jasper D. E. (1982). The role of Mycoplasma in bovine mastitis. Journal of the American Veterinary Medical Association, 181(2), 158–162.