МАКРОСКОПІЧНА ХАРАКТЕРИСТИКА НАДНИРКОВОЇ ЗАЛОЗИ ПТАХІВ
Анотація
Надниркова залоза є периферичним органом ендокринної системи. Її гормони впливають на ріст і диференціювання тканин, регулюють білковий, вуглеводний, жировий водний, і мінеральний обміни, впливають на резистентність організму до інфекцій, стресу, інтоксикації та інших факторів. Метою роботи було встановити особливості макроскопічної будови надниркової залози птахів ряду Куроподібні (свійські перепел, курка та індик), Гусеподібні (індокачка, свійські качка і гуска) і Голубоподібні (голуб сизий). Використано порівняльно-анатомічні, органометричні та статистичні методи досліджень. Встановлено, що форма надниркової залози у досліджуваних птахів різна. Для правої надниркової залози характерні півмісяцева (свійський перепел), округла (свійська курка), трикутна (свійський індик), квадратна (індокачка), округло-видовжена (свійська качка), пірамідальна (свійська гуска), видовжено-пірамідальна (голуб сизий) форми. Ліва надниркова залоза пірамідальної (свійські курка і качка), півмісяцевої (свійський перепел), комоподібної (свійський індик), видовжено-овальної (свійська гуска) або видовжено-округлої (голуб сизий) форми. Колір надниркової залози сизого голуба, свійських курки і перепела є блідо-жовтим. В інших видів досліджуваних птахів він варіює від золотисто-жовтого (індокачка, свійські індик і гуска) до жовто-коричневого (свійська качка). Абсолютна маса надниркової залози птахів залежить від маси їх тіла, збільшується з 0,023±0,00 г у свійського перепела до 0,175±0,003 г у свійського індика (ряд Куроподібні), з 0,076±0,004 г в індокачки до 0,662 ± 0,007 г у свійського індика (ряд Гусеподібні). У голуба сизого (ряд Голубоподібні) абсолютна маса надниркової залози найменша серед усіх досліджуваних птахів і дорівнює 0,019± 0,001 г. Щодо довжини, ширини, товщини надниркової залози, вони найбільші у свійської гуски (10,95±0,26, 9,48±0,23, 4,71±0,17 мм відповідно), а найменші – у голуба сизого (3,53±0,04, 2,59±0,16, 1,33±0,03 мм відповідно). У всіх досліджуваних птахів найбільше середнє значення має довжина, дещо менше ширина і найменше – товщина надниркової залози. Ліва надниркова залоза, порівняно до правої надниркової залози, відносно довша. Встановлені особливості макроскопічної будови надниркової залози птахів можна використовувати для створення бази її нормальної морфологічної характеристики, що дасть можливість робити оцінку морфо-функціонального стану даного органа в умовах впливу різних факторів та за патології.
Посилання
2. Al-Zubaidi, K. A., & Shaimaa, M. N. (2020). Histological and histomorphometrical postnatal developmental study of adrenal gland in Awassi sheep (Ovis aris). Plant Archives, 20(1), 1602–1606.
3. Barreiro-Vázquez, J.-D., Barreiro, A., & Miranda, M. (2020). Ultrasonography of Normal Adrenal Glands in Adult Holstein–Friesian Cows: A Pilot Study. Animals, 10(7), 1171. doi:10.3390/ani10071171.
4. Brooks B., & H. Munro, R. (2016). The veterinary forensic necropsy: a review of procedures and protocols. Veterinary Pathology, 53(5), 919–928. doi:10.1177/0300985816655851.
5. Colcimen, N., & Cakmak, G. (2020). A stereological study of the renal and adrenal glandular structure of red-legged partridge (Alectoris chukar), Folia morphology, 80(1), 210–214. doi: 10.5603/FM.a2020.0010.
6. Di Lorenzo, M., Barra, T., Rosati, L., Valiante, S., Capaldo, A., De Falco, M., & Laforgia, V. (2020). Adrenal gland response to endocrine disrupting chemicals in fishes, amphibians and reptiles: A comparative overview. General and Comparative Endocrinology. 297. 113–550. https://doi.org/10.1016/j.ygcen.2020.113550.
7. El-Desoky, S. M., & El-Zahraa, F. M. (2021). Morphological and histological studies of the adrenal gland in the Japanese quail (Coturnix japonica). Microscopy Research and Technique, 27. doi:10.1002/jemt.23791.
8. Elzoghby, I. M. (2010). Light and electron microscope studies of the adrenal glands of the Egyptian Geese (Alopochen aegyptiacus). Lucrări științifice-Medicină Veterinară, Universitatea de științe Agricole și Medicină Veterinară, 12(1), 195–203.
9. Fathima, R. & Lucy, K. (2014). Morphological studies on the adrenal gland of kuttanad ducks (Anas platyrhynchos domesticus) during post hatch period. Journal of Agriculture and Veterinary Science, 7(6), 58–62.
10. Gaber, W., & Abdel-Maksoud, F. M. (2019). Interrenal tissue, chromaffin cells and corpuscles of Stannius of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Microscopy, 68(3), 195–206. doi:10.1093/jmicro/dfy146.
11. Hays, V. J. (2018). The Development of the Adrenal Glands of Birds (Classic Reprint). Forgotten Books. 28.
12. Jabbar, I. A., Kareem, H., & Abdulghafoor, R. (2021). Histomorphological Comparative Study of the Adrenal Glands in Local Guinea Fowl (Numida Meleagris) and Muscovy duck (Cairina Moschata Domestica). Annals of Romanian Society for Cell Biology, 25(3), 4360–4369.
13. Kigata, T., & Shibata, H. (2018). Arterial supply to the rabbit adrenal gland. Anatomical Science International, 93(4), 437–448. doi:10.1007/s12565-018-0433-2.
14. Kober, H., Masato, A. & Shoei, S. (2012). Morphological and Histological Studies on the Adrenal Gland of the Chicken (Gallus domesticus). Journal of Poultry Science, 49(1), 39–45. https://doi.org/10.2141/jpsa.011038.
15. Kot T. F., & Prokopenko V. S. (2020). Osoblivostі morfologії nadnirkovoї zalozi kurej [Peculiarities of the vorphology of the adrenal glands of chickens]. Naukovі gorizonti, 5 (90), 82–88. doi:10.33249/2663-2144-2020-90-5-82-88. (in Ukrainian).
16. Kot, T. F., Rudyk, S. K., Huralska, S. V., Zaika, S. S., & Khomenko, Z. V. (2021). Doslidzhennia morfolohii nadnyrkovoi zalozy iz davnyny do sohodennia [Study of adrenal morphology fromantiquity to the present day]. Naukovyi visnyk Lvivskoho natsionalnoho universytetu veterynarnoi medytsyny ta biotekhnolohii imeni S. Z. Gzhytskoho, 101(23), 75–81. doi:https://doi.org/10.32718/nvlvet10113. (in Ukrainian).
17. Lauteri, E., Mariella, J. Beccati, F., Roelfsema, E., Castagnetti, C., Pepe, M., Barbato, O., Montillo, M., Rouge, S., Freccero, F., & Peric, T. (2020). Ultrassonographic measurement of the adrenal gland in nejnatal foals reliability of the technique and assessment of variation in healthy foals during the first file days of life. The Veterinary record, 187(12), 1–6. doi: http://hdl.handle.net/11391/1476185.
18. Lotfi, C. F., Kremer, J. L., Passaia, B. S., & Cavalcante, I. P. (2018). The human adrenal cortex: growth control and disorders. Clinics, Sao Paulo, 73(1), 473.
19. Moawad, U., & Hassan, M. R. (2017). Histocytological and histochemical features of the adrenal gland of Adult Egyptian native breeds of chicken (Gallus Gallus domesticus). Journal of Basic and Applied Sciences, 6(2), 199–208. doi: org/10.1016/j.bjbas.2017.04.001.
20. Moghadam, D., & Mohammadpour, A. (2017). Histomorphological and stereological study on the adrenal glands of adult female guinea fowl (Numida meleagris). Comparative Clinical Pathology, 26(3), 1227–1231. doi:10.1007/s00580-017-2514-3.
21. Moghanlo, M. D., & Mohammadpour, A. A. (2019). Anatomy and histomorphology of thyroid, parathyroid and ultimobranchial glands in Guinea fowl (Numida meleagris). Comparative Clinical Pathology, 28(1), 225–231.
22. Qureshi, S., Khan, M., Shafi, S., Mir, M., Adil, S., & Khan, A. (2020). A study on histomorphology of adrenal gland in broiler chickens subjected to cold stress and its ameliorating remedies. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 9(4), 1160–1168. doi:10.20546/ijcmas.2020.904.137.
23. Reavill, D., & Schmidt, R. (2019). Post-mortem examination. Manual of ackyard poultry medicine and surgery. BSAVA. Manual of Bachyard Poultry Medicine and Surgery, 25, 291–308. doi:10.22233/9781910443194.25.
24. Reharison, F., Bourges Abell, N., Sautet, J., Deviers, A., & Mogicato, G. (2017). Anatomy, histology, and ultrasonography of the normal adrenal gland in brown lemur: Eulemur fulvus. Journal of Medical Primatology, 46(2), 25–30. https://doi.org/10.1111/jmp.12255.
25. Sadon, A. H. (2018). Morphological and histochemical study of adrenal gland in local domestic pigeons (Columba livia domestica) in Basrah province. Basrah of Journal Veterinary Researsh, 17(1), 74–85. doi: 0.18535/jmscr/v5i9.58.
26. Sarkar, S., Islam, M. N., Adhikary, N. G., Paul, B., & Bhowmik, N. (2014). Morphological and histological studies on the adrenal gland in male and female chicken (Gallus domesticus). International Journal of Biological and Pharmaceutical Research, 5(9),715–718.
27. Scanes, C. G. (2020). Avian physiology: are birds simply feathered mammals? Physiology, 11(9), 1–6. doi: 10.3389/fphys.2020.542466.
28. Tang, L., Peng, K.-M., Wang, J.-X., Luo, H.-Q., Cheng, J.-Y., Zhang, G.-Y., Sun, Y.-F., Liu, H.-Z., & Song, H. (2009). The morphological study on the adrenal gland of African ostrich chicks. Tissue and Cell, 41(4), 231–238. https://doi.org/10.1016/j.tice.2008.11.003.
29. Uetsuka, K., Suzuki, T., Chambers, K., Uchida, K., Doi, K., & Nunoya, T. (2018). Proliferative changes in the adrenal medulla of aged Chinese native pigs. Journal of Veterinary Medical Science, 80(6), 968–972. doi:10.1292/jvms.17-0630.
30. Vuković, S., Lucić, H., Živković, A., Gomerčić, M., Gomerčić, T., & Galov, A. (2010). Histological Structure of the Adrenal Gland of the Bottlenose Dolphin (Tursiops truncatus) and the Striped Dolphin (Stenella coeruleoalba) from the Adriatic Sea. Anatomia Histologia Embryologia, 39(1), 59–66. https://doi.org/10.1111/j.1439-0264.2009.00981.x.
31. Ye, L. X., Wang, J. X., Li, P., & Zhang, X. T. (2018). Distribution and morphology of ghrelin immunostained cells in the adrenal gland of the African ostrich. Biotechnic Histochemestry, 93(1), 1–7. doi: 10.1080/10520295.2017.1372631.
32. Zakrevska, M. V., & Tybinka, A. M. (2019). Histological characteristics of accessory adrenal glands of rabbits with different types of autonomous tonus. Veterinary Medicine and Biotechnologies, 21(93), 1–6. doi:https://doi.org/10.32718/nvlvet9322.