КОНСТРУКЦІЯ ТА ХАРАКТЕРИСТИКА STEE-ДЕЛЕЦІЙНОГО МУТАНТА SALMONELLA PULLORUM
Анотація
Сальмонельоз курей – це бактеріальне інфекційне захворювання, що спричинене сероваром Salmonella enterica Pullorum (S. Pullorum). Це захворювання, широко реєструється в сучасних птахівничих господарствах. Основними клінічними симптомами хвороби є пронос білого кольору та задишка, смертність може досягати 100 %. Поточні заходи для запобігання та боротьби з захворюванням – це контроль біобезпеки та заходів профілактики, які направлені на своєчасне виявлення хворої птиці, постійного спостереження за здоровими курчатами та виявлення шляхів передачі інфекціі. Незважаючи на те, що використання антибіотиків зменшує загибель хворої птиці, але це не може 100% знищити патогенні мікроорганізми в організмі птиці, крім того це викликає виникнення антибіотикорезістентних штамів мікроорганізмів, що є загрозою для людини. Тому важливим є необхідність вивчення та розробки заходів профілактики та контролю, включаючи нові вакцини. Як новий фенотип вірулентності, steE кодується Gifsy-1 через регуляцію системи секреції III типу 1 і 2 (T3SS1 і T3SS2). SteE відіграє важливу роль в еволюції специфічності господаря мікроорганізмів роду Salmonella. На лабораторній моделі при зараженні мишей steE підвищується вірулентність Salmonella та експресія протизапальних цитокінів. Однак роль steE в патогенезі Salmonella потребує подальшого вивчення. На сучасному рівні більшість досліджень steE в основному проводиться на моделі інфекції S. Typhimurium, тоді як на моделях S. Pullorum було проведено мало досліджень. Немає повідомлень про роль steE в клітинах HD-11, інфікованих S. Pullorum. В своїх дослідженнях ми успішно сконструювали делеційний штам steE S. Pullorum за допомогою системи рекомбінації λ-Red. Ріст і біохімічні характеристики S. Pullorum steE були подібні до S. Pullorum. Крім того, ми також спостерігали вплив steE на проліферацію та апоптоз клітин HD-11, інфікованих S. Pullorum. Патогенез Salmonella – це два T3SS, закодовані в острівцях патогенності Salmonella 1 і 2 (SPI-1 і SPI-2), які відповідають за секрецію та транслокацію набору бактеріальних білків, які називаються ефекторами, у клітини-господарі з наміром змінити фізіологію клітини-господаря для проникнення та виживання бактерій. Підтримка функції SCV невіддільна від участі ряду факторів вірулентності сальмонели, в яких T3SS2, кодований SPI-2, і його секретований ефекторний білок. Що steE регулює активацію макрофагів та імунну відповідь господаря. Дослідження показали, що сальмонела може колонізуватися в кишечнику і селезінці та безпосередньо приймати макрофаги як клітини-мішені. Після зараження S. Pullorum бактерія може не тільки уникнути знищення внутрішньоклітинних активних речовин, але й проліферувати та поширюватися в макрофагах. SteE необхідний для реплікації та вірулентності Salmonella в макрофагах. Таким чином, ми встановили, що патогенний механізм інфекції S. Pullorum у птиці може бути таким же, як і в клітинах HD-11. SteE було обрано як дослідницький ген на основі системи рекомбінації λ-Red для конструювання штаму S. Pullorum steE. Результати показали, що ростові та біохімічні характеристики штамів S. Pullorum і S. Pullorum steE схожі. Доведено, що steE зменшить здатність до колонізації та вірулентність S. Pullorum у клітинах HD-11. Індукований S. Pullorum апоптоз клітин HD-11 є особливим механізмом вірулентності, який може сприяти поширенню бактерій між клітинами. Дослідження показали, що делеція S. Pullorum SPI-2 значно знижує патогенність курчат, що узгоджується з приналежністю steE до ефекторного білка SPI-2. Результати інфікування S. Pullorum клітин HD-11 також показали, що steE посилює внутрішньоклітинну життєздатність S. Pullorum і сприяє апоптозу клітин HD-11. У сукупності наші дані демонструють, що ген steE бере участь у вірулентності S. Pullorum і сприяє розробці ослабленої вакцини проти S. Pullorum.
Посилання
2. Ding, J., Zhou, H., Luo, L., Xiao, L., Yang, K., Yang L., et al. (2021). Heritable gut microbiome associated with Salmonella enterica serovar Pullorum infection in chickens. mSystems, 6:e01192-20. doi: 10.1128/mSystems.01192-20
3. Fei, X., Li, Q., Olsen, JE., Jiao, X. (2020). A bioinformatic approach to identify core genome difference between Salmonella Pullorum and Salmonella Enteritidis. Infect Genet Evol, 85:104446. doi: 10.1016/j.meegid.2020.104446
4. Geng, S., Wang, Y., Xue, Y., Wang, H., Cai, Y., Zhang, J., et al. (2019). The SseL protein inhibits the intracellular NF-κB pathway to enhance the virulence of Salmonella Pullorum in a chicken model. Microb Pathog, 129:1-6. doi: 10.1016/j. micpath.2019.01.035
5. Gulati, A., Shukla, R., Mukhopadhaya, A. (2019). Salmonella effector SteA suppresses proinflammatory responses of the host by interfering with IκB degradation. Front Immunol, 10:2822. doi: 10.3389/fimmu.2019.02822.
6. Gibbs, K. D., Washington, E. J., Jaslow, S. L., Bourgeois, J. S., Foster, M, W., Guo, R., et al. (2019). The Salmonella secreted effector SarA/SteE mimics cytokine receptor signaling to activate STAT3. Cell Host Microbe, 27:129-139.e4. doi: 10.1016/j.chom.2019.11.012
7. Ho, K., Harshey, R. M. (2021). Goodbye PAM: Phage λ’s Red recombination system cripples PAMs and helps dodge CRISPR attacks. Cell Host Microbe, 29:1469-1471. doi: 10.1016/j.chom.2021.09.011
8. Islam, M. S., Hu, Y., Mizan, M. F. R., Yan, T., Nime, I., Zhou, Y., et al. (2020). Characterization of Salmonella phage LPST153 that effectively targets most prevalent Salmonella serovars. Microorganisms, 8:1089-1107. doi: 10.3390/ microorganisms8071089
9. Johnson, R., Mylona, E., and Frankel, G. (2018). Typhoidal Salmonella: distinctive virulence factors and pathogenesis. Cell Microbiol, 20:e12939. doi: 10.1111/cmi.12939
10. Kodama, T., Hiyoshi, H., Okada, R., Matsuda, S., Gotoh, K., Iida, T. (2015). Regulation of vibrio parahaemolyticus T3SS2 gene expression and function of T3SS2 effectors that modulate actin cytoskeleton. Cell Microbiol, 17:183-190. doi: 10.1111/cmi.12408
11. Lawley, T. D., Chan, K., Thompson, L. J., Kim, C. C., Govoni, G. R., Monack, D. M. (2006). Genome-wide screen for Salmonella genes required for long-term systemic infection of the mouse. PLoS Pathog, 2:e11. doi: 10.1371/journal. ppat.0020011
12. Lin, Z., Tang, P., Jiao, Y., Kang, X., Li, Q., Xu, X., et al. (2017). Immunogenicity and protective efficacy of a Salmonella Enteritidis sptP mutant as a live attenuated vaccine candidate. BMC Vet Res, 13:194-203. doi: 10.1186/s12917-017-1115-3
13. Li Q, Wang X, Xia J, Yuan Y, Yin C, Xu L, et al. (2018). Salmonella-containing vacuole development in avian cells and characteristic of cigR in Salmonella enterica serovar pullorum replication within macrophages. Vet Microbiol, 223:65–71. doi: 10.1016/j.vetmic.2018.07.013
14. Matos, M., Sommer, F., Liebhart, D., Bilic, I., Hess, M., Hess, C. (2020). An outbreak of Pullorum disease in a young layer parent flock in Austria presented with central nervous system signs. Avian Dis, 65:159-164. doi: 10.1637/ aviandiseases-D-20-00091
15. Niemann, G. S., Brown, R. N., Gustin, J. K., Stufkens, A., Shaikh-Kidwai, A. S., Li, J., et al. (2011). Discovery of novel secreted virulence factors from Salmonella enterica serovar Typhimurium by proteomic analysis of culture supernatants. Infect Immun, 79:33-43. doi: 10.1128/IAI.00771-10
16. Panagi, I., Jennings, E., Zeng, J., Günster, R. A., Stones, C. D., Mak, H., et al. (2020). Salmonella effector SteE converts the mammalian Serine/Threonine kinase GSK3 into a tyrosine kinase to direct macrophage polarization. Cell Host Microbe, 27: 41–53. doi: 10.1016/j.chom.2019.11.002
17. Pham, T. H. M., Brewer, S. M., Thurston, T., Massis, L. M., Honeycutt, J., Lugo, K., et al. (2020). Salmonella-driven polarization of granuloma macrophages antagonizes TNF-mediated pathogen restriction during persistent infection. Cell Host Microbe, 27:54–67. doi: 10.1016/j.chom.2019.11.011
18. Stapels, D. A. C., Hill, P. W. S., Westermann, A. J., Fisher, R. A., Thurston, T. L., Saliba, A. E., et al. (2018). Salmonella persisters undermine host immune defenses during antibiotic treatment. Science, 362:1156–1160. doi: 10.1126/ science.aat7148
19. Ter, Veen. C., Feberwee, A., Augustijn, M., de, Wit. S. (2022). High specificity of the Salmonella Pullorum/Gallinarum rapid plate agglutination test despite vaccinations against Salmonella Enteritidis and Salmonella Typhimurium. Avian Pathol. 51:19-25. doi: 10.1080/03079457.2021.1990854
20. Vaid, R. K., Thakur, Z., Anand, T., Kumar, S., Tripathi, B. N. (2021). Comparative genome analysis of Salmonella enterica serovar Gallinarum biovars Pullorum and Gallinarum decodes strain specific genes. PLoS One, 16:e0255612. doi: 10.1371/journal.pone.0255612
21. Wang, X. D., Li, C. Y., Jiang, M. M., Li, D., Wen, P., Song, X., et al. (2016). Induction of apoptosis in human leukemia cells through an intrinsic pathway by cathachunine, a unique alkaloid isolated from Catharanthus roseus. Phytomedicine, 23:641-653. doi: 10.1016/j.phymed.2016.03.003
22. Xian, H., Yuan, Y., Yin, C., Wang, Z., Ji, R., Chu, C., et al. (2020). The SPI-19 encoded T6SS is required for Salmonella Pullorum survival within avian macrophages and initial colonization in chicken dependent on inhibition of host immune response. Vet Microbiol, 250:108867. doi: 10.1016/j.vetmic.2020.108867
23. Yin, J., Xia, J., Tao, M., Xu, L., Li, Q., Geng, S., et al. (2016). Construction and characterization of a cigR deletion mutant of Salmonella enterica serovar Pullorum. Avian Pathol, 45:569-575. doi: 10.1080/03079457.2016.1187708
24. Yu, X. J., Liu, M., Holden, D. W. (2016). Salmonella effectors SseF and SseG Interact with mammalian protein ACBD3 (GCP60) to anchor Salmonella-containing vacuoles at the golgi network. mBio, 7:e00474-16. doi: 10.1128/ mBio.00474-16