ЗМІНИ РІВНІВ АУТОАНТИТІЛ ДО КЛІТИННИХ ФОСФОЛІПІДІВ, ЦИТОПЛАЗМИ НЕЙТРОФІЛІВ ТА НУКЛЕАРНИХ АНТИГЕНІВ ЗА ХРОНІЧНОГО ЛАМІНІТУ В КОНЕЙ

Ключові слова: APHL IgM, APHL IgG, dsDNA, ssDNA, ANCA, сироватка крові, копитна дерма, ламініт, коні

Анотація

Патогенетичні механізми, що беруть участь у виникненні ламініту відрізняються на основі теорій, які ґрунтуються на запальних, судинних, ферментативних, метаболічних або травматичних факторах. Стосовно двох механізмів, які в минулому користувалися великою прихильністю, тобто запалення та дисфункції пальцевих судин, точаться дискусії щодо того, який є основним або вони є взаємозалежні та мають одночасний початок, маючи на увазі, що мікроциркуляція в дистальній фаланзі завжди відіграє вирішальну роль в ініціації ламініту. Згідно останніх досліджень за хронічного ламініту, в окремих гіперреактивних ділянках дермальних ламел, відбуваються епізоди субклінічного перебігу та загострень, після впливу антигенної стимуляції від вакцинацій або алергенів навколишнього середовища, а також, аутоімунними компонентами запальної реакції, що посилює індукцію хемокінів для нейтрофілів, чим пролонгує запалення та імунологічну гіперреактивність. Метою наших досліджень було визначити рівні аутоантитіл до фосфоліпідів, дезоксирибонуклеїнової кислоти, цитоплазми нейтрофілів, як маркерів хронічного імунозалежного запалення сполучної тканини та мікроциркуляторного русла в сироватці крові та гомогенатах основи шкіри копита за гострих пододерматитів і хронічних ламінітів. Матеріалом для досліджень була сироватка крові, а також фрагменти листочкової та сосочкової основи шкіри копит коней без ортопедичної патології, із гострим асептичним пододерматитом та хронічним ламінітом. З метою збільшення інформативності, кров для дослідження відбирали з регіонарних вен відповідних кінцівок – підшкірна вена передпліччя (грудна кінцівка) та підшкірна вена гомілки (тазова кінцівка). Наважки зразків копитної дерми відмивали у фізіологічному розчині, гомогенізували на холоді у РВS буфері (рН 7,4), з 1% розчином тритону Х-100 у співвідношенні 1:40 та залишали при +4◦С на 2 години, надалі гомогенат тканин центрифугували при 3000 об/хв. протягом 15 хв. після чого надосадову рідину піддавали кріоконсервації. В сироватці крові та гомогенатах копитної дерми визначали рівень антифосфоліпідних антитіл класів APHL IgG, APHL IgМ методом твердо фазного імуноферментного ELISA аналізу, аутоантитіл до нативної, двохланцюгової дезоксирибонуклеїнової кислоти (dsDNA) та аутонуклеарних антитіл до одноланцюгової, денатурованої дезоксирибонуклеїнової кислоти (ssDNA), а також антицитоплазматичних антитіл до нейтрофілів (ANCA) – автоматизованим імуноферментативним методом ELIA Phadia. Уміст аутоантитіл до APHL, dsDNA, ssDNA та cANCA у тканинних зразках гомогенатів дерми копита розраховували з урахуванням співвідношення (тканина–РВS буфер). Встановлено, що а хронічного ламініту в коней рівень APHL класів IgM зростає в сироватці крові та гомогенатах копитної дерми до 5,43±0,70 IU/мl та 33,95±7,63 IU/мl, відповідно, а для класу IgG до 9,43±1,22 IU/мl в сироватці крові та до 77,50±10,06 IU/мl. Рівень аутоантитіл до dsDNA та ssDNA в сироватці крові коней з хронічним ламінітом підвищується до значень 20,18±1,92 IU/мl і 19,55±2,66 IU/мl, проти 5,68±0,82 IU/мl і 5,19 IU/мl у клінічно здорових тварин, відповідно. Концентрація аутоантитіл до dsDNA та ssDNA в гомогенатах копитної дерми коней за хронічного ламініту зростає до 270,0±25,11 IU/мl і305,50±26,48 IU/мl, проти 78,80±14,21 IU/мl і 68,80±12,22 IU/мl у клінічно здорових тварин, відповідно. Сироваткові антицитоплазматичні антитіла ANCA, у клінічно здорових коней не виявлялися у 100% тварин, тоді як за гострого пододерматиту позитивна реакція виявлена в 20%, а за хронічного ламініту в 62,5% випадків. Перспективою подальших досліджень, є дослідження функціонування імунної системи та патогенетичних механізмів формування імунозалежного запалення за хронічних ламінітів у коней.

Посилання

1. Baxter, G.M. (1999). Aggiornamenti clinico-terapeutici sulla laminite equina. Equine laminitis. Ippologia, 10, 5–31.
2. Blount, S., Griffiths, H.R., Staines, N.A., Lunec, J. (1992). Probing molecular changes induced in DNA by reactive oxygen species with monoclonal antibodies. Immunology Letters, 34, 115–126. DOI: 10.1016/0165-2478(92)90237-I
3. Carter, R.A., Engiles, J.B., Megee, S.O., Senoo, M., Galantino-Homer, H.L. (2011). Decreased expression of p63, a regulator of epidermal stem cells, in the chronic laminitic equine hoof. Equine veterinary journal, 43(5), 543–551.
4. Faleiros, R.R., Stokes, A.M., Eades, S.C., Kim, D.Y., Paulsen, D.B., Moore, R.M. (2004). Assessment of apoptosis in epidermal lamellar cells in clinically normal horses and those with laminitis. Am J Vet Res, 65(5), 578–585.
5. French, K.R. (2004). Equine laminitis: cleavage of laminin 5 associated with basement membrane dysadhesion. Equine vet. J, 36, 242–247.
6. Gilligan, H.M., Bredy, B., Brady, H.R., Hubert, M.J., Slayter, H.S. (1996). Antineutrophil cytoplasmic autoantibodies interact with primary granule constituents on the surface of apoptotic neutrophils in the absence of neutrophil priming. J. Exp. Med, 184 (6), 2231–2241.
7. Hirabayashi, Y., Oka, Y., Tada, M., Takahashi, R., Ishii, T. (2007). A potential trigger of nephritogenic anti-DNA antibodies in lupus nephritis. Ann NY Acad Sci, 1108, 92–95.
8. Hirabayashi, Y., Oka, Y., Ikeda, T., Fujii, H., Ishii, T., Sasaki, T. (2010). The endoplasmic reticulum stress-inducible protein, Herp, is a potential triggering antigen for anti-DNA response. J Immunol, 184, 3276–3283.
9. Johnson, P.J., Wiedmeyer, C.E., LaCarrubba, A., Ganjam, V.K., Messer, N.T. (2010). Laminitis and the equine metabolic syndrome. Vet. Clin. North Am. Equine Pract, 26, 239–255.
10. Johnson, P.J., Ganjam, V.K., Slight, S.H., Kreeger, J.M., Messer, N.T. (2004). Tissue-specific dysregulation of cortisol metabolism in equine laminitis. Equine Vet J, 36(1), 41–45.
11. Kaneko, M., Niinuma, Y., Nomura, Y. (2003.) Activation signal of nuclear factor-kappa B in response to endoplasmic reticulum stress is transduced via IRE1 and tumor necrosis factor receptor-associated factor 2. Biol Pharm Bull, 26, 931–935.
12. Kallenberg, C.G., Brouwer, E., Weening, J.J., Tervaert, J.W. (1994). Anti-neutrophil cytoplasmic antibodies: current diagnostic and pathophysiological potential. Kidney Int, 46 (1), 1–15.
13. Kuwano, A., Ueno, T., Katayama, Y., Nishiyama, T., Arai, K. (2005). Unilateral basement membrane zone alteration of the regenerated laminar region in equine chronic laminitis. J Vet Med Sci, 67(7), 685–691.
14. Lazorenko, A.B. (2012). Rol faktoru nekrozu pukhlyn ta modyfikovanoho tsytrulinovanoho vimentynu v rozvytku imunozalezhnoho zapalennia spoluchnotkanynnykh utvoren kopyt u konei [Tumor necrosis factor and the modified citrullinated vimentin in developing immunodependent inflammation of connective tissue formations of the horses' hoofs]. Vet. medytsyna Ukrainy, 1, 27–29 [in Ukrainian].
15. Lazorenko, A.B. (2011). Zminy lipidnoho spektru klitynnykh membran kopytnoi dermy za aseptychnoho yii zapalennia v konei [Lipids metabolism spectrum of cellular membranes of hoof derma at its aseptic inflammation for horse]. Visnyk Sumsk. natsion. ahrar. un-tu, 1 (28), 102–105 [in Ukrainian].
16. Lecchi, C., Dalla, C., Lebelt, D., Ferrante, V., Canali, E., Ceciliani, F. (2018). Circulating miR-23b-3p, miR-145-5p and miR-200b-3p are potential biomarkers to monitor acute pain associated with laminitis in horses. Animal, 12(2), 366–375.
17. Morgan, S.J. Grosenbaugh, D.A., Hood, D.M. (1999). The pathophysiology of chronic laminitis. Pain and anatomic pathology. Vet. Clin. Equine Pract, 15, 395–417.
18. Moore, R.M. (2010). Vision 20/20 – conquer laminitis by 2020. J Eq Vet Sci, 30(2), 74–76.
19. Merashli, M., Alves, J., Ames, P. (2017). Clinical relevance of antiphospholipid antibodies in systemic sclerosis: a systematic review and meta-analysis. Semin Arthritis Rheum, 46, 615–624. DOI: 10.1016/j.semarthrit.2016.10.004.
20. Marcato, P.S., Perillo, A. (2020). Equine laminitis. New insights into the pathogenesis. Large Animal Review, 26, 353–363.
21. Miyakis, S., Lockshin, M., Atsumi, T. (2006). International consensus statement on an update of the classification criteria for definite antiphospholipid syndrome (APS). J Thromb Haemost, 4, 295–306. DOI: 10.1111/j.1538-7836.2006.01753.x.
22. Mallolas, J., Esteve, M., Rius, E., Cabré, E., Gassull, M.A. (2000). Antineutrophil antibodies associated with ulcerative colitis interact with the antigen(s) during the process of apoptosis. Gut, 47 (1), 74–78. DOI: 10.1136/gut.47.1.74
23. Ortel, T.L. (2012). Antiphospholipid syndrome: laboratory testing and diagnostic strategies. Am J Hematol, 87(1), 75–81. DOI: 10.1002/ajh.23196.
24. Pollitt, C.C. (1994). The basement membrane at the equine hoof dermal epidermal junction. Equine vet. J, 26, 399–407. DOI: 10.1111/j.2042-3306.1994.tb04410.x.
25. Pollitt, C.C., Daradka, М.P. (1998). Equine laminitis basement membrane pathology: loss of type IV collagen, type VII collagen and laminin immunostaining. Equine vet. J, 30, 139–144. DOI: 10.1111/j.2042-3306.1998.tb05133.x.
26. Steelman, S.M., Chowdhary, B.P. (2012). Plasma proteomics shows an elevation of the anti-inflammatory protein APOA-IV in chronic equine laminitis BMC. Veterinary Research, 8, 179.
27. Sun, K.H., Yu, C.L., Tang, S.J., Sun, G.H. (2000). Monoclonal anti-double-stranded DNA autoantibody stimulates the expression and release of IL-1beta, IL-6, IL-8, IL-10 and TNF-alpha from normal human mononuclear cells involving in the lupus pathogenesis. Immunology, 99, 352–360. DOI: 10.1046/j.1365-2567.2000.00970.x.
28. Thoburn, R., Hurvitz, I., Kunkel, H. (1972) A DNA-Binding Protein in the Serum of Certain Mammalian. Proc Natl Acad Sci USA. 69(11), 3327–3330. DOI: 10.1073/pnas.69.11.3327
29. Todd, D.J., Lee, A.H., Glimcher, L.H. (2008). The endoplasmic reticulum stress response in immunity and autoimmunity. Nat Rev Immunol, 8, 663–674. DOI: 10.1038/nri2359.
30. Wagner, I.P., Rees, C.A., Dunstan, R.W., Credille, K.M., Hood, D.M. (2003). Evaluation of systemic immunologic hyperreactivity after intradermal testing in horses with chronic laminitis. Am J Vet Res, 64(3), 279–283. DOI: 10.2460/ajvr.2003.64.279.
31. Yung, S., Cheung, K., Zhang, Q., Chan, T. (2010). Anti-dsDNA antibodies bind to mesangial annexin II in lupus nephritis. J Am Soc Nephrol, 21, 1912–1927. DOI: 10.1681/ASN.2009080805.
32. Zhang, K., Kaufman, R. (2008). From endoplasmic-reticulum stress to the inflammatory response. Nature, 454, 455–462. DOI: 10.1038/nature07203.
Опубліковано
2023-06-06
Як цитувати
Лазоренко, А. Б., Бондаренко, І. В., & Мусієнко, Ю. В. (2023). ЗМІНИ РІВНІВ АУТОАНТИТІЛ ДО КЛІТИННИХ ФОСФОЛІПІДІВ, ЦИТОПЛАЗМИ НЕЙТРОФІЛІВ ТА НУКЛЕАРНИХ АНТИГЕНІВ ЗА ХРОНІЧНОГО ЛАМІНІТУ В КОНЕЙ. Вісник Сумського національного аграрного університету. Серія: Ветеринарна медицина, (1(60), 51-56. https://doi.org/10.32782/bsnau.vet.2023.1.9