МІКРОБНЕ ОБСІМЕНІННЯ ЗЕРЕН ПШЕНИЦІ, ВИРОЩЕНОЇ В ЖИТОМИРСЬКОМУ ПОЛІССІ

Ключові слова: мікробні асоціації, міцелі альні гриби, токсинопродуценти, агар Чапека

Анотація

Активний розвиток тваринництва потребує забезпечення галузі раціонами, у яких має бути врахована і поживність, і якість та безпечність компонентів. Визначення поживності корму є стандартною та нескладною задачею. Але корми, досконалі за органолептикою, можуть нести приховану небезпеку – мікотоксини. Ці речовини мікроскопічні гриби виділяють в стресових ситуаціях для забезпечення власного виживання. Нами було оцінено обсіменіння поверхні зерен пшениці, вирощеної в Житомирському Поліссі в 2020 р., зародками потенційних продуцентів мікотоксинів. Склад мікробних асоціацій вивчали за умов інкубації на агарі Чапека, за температури 32˚С, 23˚С та 15˚С (відповідно до коливань температур періоду збору врожаю пшениці в даному регіоні). На агарі Чапека, за будь яких умов культивування, розвивались представники морфологічної групи грибів (міцеліальні, дріжджові) та поодинокі клітини різних видів бацил. Навколо зерен, інкубованих за температур 23˚С та 32˚С реєстрували незначну кількість окремих колоній (від 20,6% до 33,9%, відповідно) та набагато більше злитих та багатошарових. В складі мікробних асоціацій, здатних розвиватись при різних температурах, краще зростали не дріжджові, а міцеліальні гриби. За 23˚С угрупувань міцеліальних грибів різних родів виявлено 81,4% від загальної кількості колоній, а за 32˚С – 72,3%. Температура 32˚С стимулювала розвиток асоціації мукоральних грибів та токсинопродуцентів з роду Aspergillus. В таких умовах мукоральні гриби за 5 діб утворювали плівки у вигляді газонів, аспергили – величезну кількість конідій. В інтервалі температур 23˚С-15˚С розвивались представники асоціації, в складі якої переважали відомі токсиноутворювачі – окремі види з родів Aspergillus, Penicillium, Alternaria тощо. Ці мікроорганізми утворювали зрілі колонії не за 5, а за 7-8 діб. Тому за влітку, при (30±2)˚С зерно пшениці, що використовується як компонент раціонів, має вивантажуватись із складських приміщень з низькою температурою через кожні 2-3 доби, а при (24±2)˚С – через 5 діб.

Посилання

1. Bryła M., Ksieniewicz-Woźniak E., Yoshinari T., Waśkiewicz A., & Szymczyk K. (2019). Contamination of Wheat Cultivated in Various Regions of Poland during 2017 and 2018 Agricultural Seasons with Selected Trichothecenes and Their Modified Forms. Toxins. 11(2):88. doi: https://doi.org/10.3390/toxins11020088
2. Chelkowski, J., Wisniewska, H., Adamski, T., Golinski, P., Kaczmarek, Z., Kostecki, M., Perkowski, J., & Surma, M. (2000). Effects of Fusarium culmorum head blight on mycotoxin accumulation and yield traits in barley doubled haploids. J. Phytopathol. 148, 541–545.
3. Cranfield, J. A. L. (2020). Framing consumer food demand responses in a viral pandemic. Canadian Journal of Agricultural Economics/Revue Canadienne D’agroeconomie, 68(2), 151–156. doi: https://doi.org/10.1111/cjag.12246
4. Cromey, M.G., Shorter, S.C., Lauren, D.R., & Sinclair, K.I. (2002). Cultivar and crop management influences on fusarium head blight and mycotoxins in spring wheat (Triticum aestivum) in New Zealand. N. Z. J. Crop Hortic. Sci. 30, 235–247.
5. Darnhofer, I. (2020). Farm resilience in the face of the unexpected: Lessons from the COVID-19 pandemic. Agriculture and Human Values, 1, 3. doi: 10.1007/s10460-020-10053-5
6. Diachenko, L. S., Syvyk, Т. L., & Tytariova, О. М. (2020). Godivlia svynei. [Pig’s fidding]. Bila Tserkva, BNAU. (in Ukrainian).
7. de Sousa, S. M., de Oliveira, C. A., Andrade, D. L., de Carvalho, C. G., Ribeiro, V. P., Pastina, M. M., ... & Gomes, E. A. (2021). Tropical Bacillus strains inoculation enhances maize root surface area, dry weight, nutrient uptake and grain yield. J Plant Growth Regul., 40, 867-877. doi: https://doi.org/10.1007/s00344-020-10146-9
8. Himich, О. V., Zdor, L. P., Lapteeev, О. О., & Semenova, О. І. (2018). Efektyvnistʹ norm vvedennya zerna trytykale u ratsionakh molodnyaku svyney. [The effectiveness of triticale grain intake in the diets of young pigs]. Kormy i kormovyrobnytstvo, (85), 125-131. (in Ukrainian).
9. Hooker, D.C., Schaafsma, A.W., & Tamburic-Ilincic, L. (2002). Using weather variables pre- and post-heading to predict deoxynivalenol content in winter wheat. Plant Dis. 86, 611–619.
10. Hu, F., Tu, X. F., Thakur, K., Hu, F., Li, X. L., Zhang, Y. S., ... & Wei, Z. J. (2019). Comparison of antifungal activity of essential oils from different plants against three fungi. Food and Chemical Toxicol., 134, 110821. doi: https://doi.org/10.1016/j.fct.2019.110821
11. Jámbor, A., Czine, P., & Balogh, P. (2020). The impact of the coronavirus on agriculture: First evidence based on global newspapers. Sustainability, 12(11), 4535. doi: https://doi.org/10.3390/su12114535
12. Krasauskas, A. (2018). Fungi isolated from maize (Zea mays L.) grain in Lithuania. Žemės ūkio mokslai, 25(4), 169-176. doi: https://doi.org/10.6001/zemesukiomokslai.v25i4.3866
13. Kyrpa, М. Ya. (2013). Naukove obhruntuvannya innovatsiynykh promyslovykh tekhnolohiy zberihannya zerna. [Scientific substantiation of innovative industrial technologies of grain storage]. Bull. Inst. Agiculture of steppe zone NААN Ukraine, (5), 93-98. (in Ukrainian).
14. Mannapova, R. Т. (2018). Mikrobiologiya i mikilogiya. Osobo opasnyye infektsionnyye bolezni, mikozy i mikotoksikozy. [Mikrobiology and Mikology. Particularly dangerous infectious diseases, mycoses and mycotoxicoses]. Textbook. Moscow, Prospekt. (in Russian).
15. Mathur, S., Sharma, M. P., & Jajoo, A. (2018). Improved photosynthetic efficacy of maize (Zea mays) plants with arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) under high temperature stress. J Photochem. & Photobiol. B: Biology, 180, 149-154. doi: https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2018.02.002
16. Mucha, J., Peay, K. G., Smith, D. P., Reich, P. B., Stefański, A., & Hobbie, S. E. (2018). Effect of simulated climate warming on the ectomycorrhizal fungal community of boreal and temperate host species growing near their shared ecotonal range limits. Microbial ecology, 75(2), 348-363. doi: https://doi.org/10.1007/s00248-017-1044-5
17. Mykhalko, O. H. (2021). Suchasnyy stan ta shlyakhy rozvytku svynarstva v sviti ta Ukrayini. [Current state and ways of pig breeding development in the world and in Ukraine]. Bul. Sumy National Agr. Univ. Series: Livestock, (3 (46)), 61-77. doi: https://doi.org/10.32845/bsnau.lvst.2021.3.9 (in Ukrainian).
18. Nagorna, L., Poscurina, І., & Nesteruk, V. (2020). Monitorynh mikolohichnoho zabrudnennya kormiv v Sumsʹkiy oblasti. [Monitoring of mycological contamination of feed in Sumy region]. In III All-Ukrainian scientific and practice Internet conference «Modern problems of biosafety in Ukraine» (pp. 44-46). Poltava, Ukraine. (in Ukrainian).
19. Oliveira, P. M., Zannini, E., & Arendt, E. K. (2014). Cereal fungal infection, mycotoxins, and lactic acid bacteria mediated bioprotection: From crop farming to cereal products. Food Microbiol., 37, 78–95. doi: https://doi.org/10.1016/j.fm.2013.06.003
20. Omotayo, O. P., Omotayo, A. O., Mwanza, M., & Babalola, O. O. (2019). Prevalence of mycotoxins and their consequences on human health. Toxicological research, 35(1), 1-7. doi: https://doi.org/10.5487/TR.2019.35.1.001
21. Pro zatverdzhennya Metodiv vidboru zrazkiv dlya vyznachennya maksymalʹno dopustymykh rivniv mikotoksyniv u kharchovykh produktakh dlya tsiley derzhavnoho kontrolyu [About the statement of Methods of sampling for definition of the maximum admissible levels of mycotoxins in foodstuff for the purposes of the state control]. Order of the Ministry of Agrarian Policy and Food of Ukrain No. 264. (May 22, 2019). Kyiv, Verkhovna Rada of Ukraine. Accepted: https://zakon.rada.gov.ua/laws/show/z0608-19#Text (in Ukrainian).
22. Santos Pereira, C., C Cunha, S., & Fernandes, J. O. (2019). Prevalent mycotoxins in animal feed: Occurrence and analytical methods. Toxins, 11(5), 290. https://doi.org/10.3390/toxins11050290
23. Snow, V., Rodriguez, D., Dynes, R., Kaye-Blake, W., Mallawaarachchi, T., Zydenbos, S., ... & Stevens, D. (2021). Resilience achieved via multiple compensating subsystems: The immediate impacts of COVID-19 control measures on the agri-food systems of Australia and New Zealand. Agricultural Systems, 187, 103025. https://doi.org/10.1016/j.agsy.2020.103025
24. State statistics service of Ukraine. (2021). Kilʹkistʹ svynei. Statystychna informatsiya. [Number of pigs. Statistical information]. [Інтернет-ресурс]. Accessed at: http://www.ukrstat.gov.ua/ (14.01.2022). (in Ukrainian).
25. Štreimikienė, D., Baležentis, T., Volkov, A., Ribašauskienė, E., Morkūnas, M., & Žičkienė, A. (2021). Negative effects of covid-19 pandemic on agriculture: systematic literature review in the frameworks of vulnerability, resilience and risks involved. Economic Research-Ekonomska Istraživanja, 1-17. https://doi.org/10.1080/1331677X.2021.1919542
26. Sytnikova, N. О., Fomina, К. F., Dudnyk, L. А., Chornozubenko, N. N., & Kuz’menko, L. І. (2008). Tekhnolohiya zberihannya i pererobky silʹsʹkohospodarsʹkoyi produktsiyi. [Technology of storage and processing of agricultural products]. Kyiv, Agroosvita. (in Ukrainian).
27. Yalpachik, V., Zagorko, N., Skliar, А., Kiurchev. S., Budenko, S., Verkholantseva. V., … & Tsyb, V. (2018). Obladnannya skladiv. Zberihannya zerna i zernoproduktiv: navchalʹnyy posibnyk. [Equipment of warehouses. Storage of grain and grain products: a textbook]. Melitopol’, Melitopol’ city printing house. URL: http://elar.tsatu.edu.ua/handle/123456789/5092 (in Ukrainian).
Опубліковано
2021-12-27
Як цитувати
Солодка, Л. О., Кривда, М. І., Костенок, С. В., & Смуров, Г. О. (2021). МІКРОБНЕ ОБСІМЕНІННЯ ЗЕРЕН ПШЕНИЦІ, ВИРОЩЕНОЇ В ЖИТОМИРСЬКОМУ ПОЛІССІ. Вісник Сумського національного аграрного університету. Серія: Ветеринарна медицина, (4 (55), 24-30. https://doi.org/10.32845/bsnau.vet.2021.4.4