КОНТРОЛЬ ЗА БУР’ЯНАМИ ПРИ ВИРОЩУВАННІ КУКУРУДЗИ
Ключові слова:
зелене добриво, кукурудза, безполицевий обробіток, потенційна засміченість, бур’яни, ґрунт, посів, урожайність
Анотація
Оцінено вплив післяжнивного сидерату редьки олійної та різних способів його загортання на зміну потенційної засміченості чорнозему типового та фактичної забур’яненості кукурудзи. Виявлено, що застосування сидерату редьки олійної забезпечувало, порівняно з безсидеральним фоном, суттєве зменшення засміченості 0–30 см шару ґрунту насінням бур’янів на 2,9–7,1 млн шт./га, знижувало в посівах кукурудзи чисельність всіх біологічних груп бур’янів – на 0,2–4,5 шт./м2 та їх масу – на 4–68 г/м2, та підвищувало врожайність зерна культури на 1,5-1,8 т/га. З’ясовано, що заміна оранки безполицевими обробітками для загортання сидерату редьки олійної знижувала запаси насіння бур’янів в шарі ґрунту 0–30 см на 0,7–1,7 млн шт./га. При цьому встановлено суттєве зростання чисельності насіння бур’янів в шарі ґрунту 0–5 і 5–10 см – на 3,3–5,6 і 14,3–16,1 млн шт./га та суттєве їх зменшення в шарах 10–20 і 20–30 см – на 10,4–13,2 і 8,1–8,4 млн шт./га. Найглибший безполицевий обробіток забезпечував найменшу потенційну засміченість шару ґрунту 0–5 см – 24,4 і 22,3 млн шт./га, що порівняно з безполицевими розпушуваннями глибиною 13–15 і 6–8 см менше на 0,6–1,1 і 2,3–3,3 млн шт./га. Заміна оранки безполицевими обробітками збільшувала чисельність та масу бур’янів в посівах кукурудзи переважно за рахунок групи ярих ранніх та пізніх. Неістотну зміну даних груп бур’янів до оранки за кількістю (0,1–0,9 шт./м2) і масою (2–24 г/м2) спостерігали за безполицевого обробітку на глибину 25–27 см. За фактичною забур’яненістю до варіанту оранки найближчим був глибокий безполицевий обробіток на 25–27 см. Різниця між ними була несуттєвою на сидеральному фоні за загальною кількістю бур’янів – 0,6–10,9 шт./м2. Зменшення глибини безполицевого обробітку призводило до суттєвого збільшення в посівах кукурудзи кількості – на 5,0–9,1 шт./м2 та маси – на 98–207 г/м2 бур’янів, що обумовлювало істотний недобір врожаю в межах 0,5–0,8 т/га. Найвищу урожайність кукурудзи отримали при застосуванні післяжнивного зеленого добрива редьки олійної на сидерат та оранки (7,7 т/га) і безполицевого обробітку на глибину 25–27 см (7,9 т/га). Дієвіший контроль потенційної і фактичної забур’яненості за післяжнивного сидерату редьки олійної та проведенням безполицевого обробітку глибиною 25–27 см сприяв отриманню найвищої врожайності зерна кукурудзи – 7,9 т/га.
Посилання
1. Armengot, L., Blanco-Moreno, J. M., Bàrberi, P., Bocci, G., Carlesi, S., Aendekerk, R. & Sans, F. X. (2016). Tillage as a driver of change in weed communities: a functional perspective. Agriculture, Ecosystems & Environment., 222, 276–285. doi:10.1016/j.agee.2016.02.021.
2. Casal, J.J. & Qüesta, J.I. (2018). Light and temperature cues: multitasking receptors and transcriptional integrators. New Phytologist., 217, 1029-1034.
3. Chauhan, B.S. & Mahajan, G. eds. (2014). Recent advances in weed management. Springer science±business media New York. doi: 10.1007/978-1-4939-1019-9.
4. Cordeau, S., Smith, R., Gallandt, E., Brown, B., Salon, P., DiTommaso, A., & Ryan, M. (2017). Timing of tillage as a driver of weed communities. Weed Science., 65(4), 504–514. doi:10.1017/wsc.2017.26.
5. Dvořák, P., Tomášek, J., Hamouz, K., & Kuchtová, P. (2016). Reply of mulch systems on weeds and yield components in potatoes. Plant, Soil and Environment., 61(7), 322–327. doi:10.17221/242/2015-pse.
6. Farhood, Y., Saeed, Z. S., Ghassem, A., Farideh, S. & Vahid, B. (2015). Effects of cover crops and weed management on corn yield / Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences., 14(2), 178–181. doi: 10.1016/j.jssas.2014.02.001.
7. Fernández-Milmanda, G.L. & Ballaré, C.L. (2021). Shade avoidance: expanding the color and hormone palette. Trends in Plant Science., 265, 509–523.
8. Hudz, V.P., Shuvar, I.A., Yunyk, A.V., Rykhlivskyi, I.P. & Mishchenko, Yu.H. (2014). Adaptyvni systemy zemlerobstva : pidruchnyk / Za red. Hudzia V.P. Kyiv: Tsentr uchbovoi literatury., 336. (in Ukrainian).
9. Haramoto, E. R., & Gallandt, E. R. (2004). Brassica cover cropping for weed management: A review. Renewable agriculture and food systems., 19, 187–198. doi:10.1079/rafs200490.
10. Horvath, D., Bruggeman, S., Moriles-Miller, J., Anderson, J., Dogramaci, M., Scheffler, B. & Clay, S. (2018). Weed presence altered biotic stress and light signaling in maize even when weeds were removed early in the critical weed-free period. Plant Direct., 2(4), e00057. doi: 10.1002/pld3.57.
11. Horvath, D., Clay, S., Bruggeman, S., Anderson, J., Chao, W. & Yeater, K. (2019). Varying weed densities alter the corn transcriptome highlighting a core set of weed-induced genes and processes with potential for manipulating weed tolerance. The Plant Genome., 12(3), 1-9. doi: 10.3835/plantgenome2019.05.0035.
12. Horvath, D., Clay, S., Swanton, C., Anderson, J. & Chao, W. (2022). Weed-induced crop yield loss: a new paradigm and new challenges. Trends in Plant Science., 28, 567–582. doi: 10.1016/j.tplants. 2022.12.014.
13. Horvath, D., Doherty, C., Desai, J., Clark, N., Anderson, J. & Chao, W. (2023). Weed-induced changes in the maize root transcriptome reveal transcription factors and physiological processes impacted early in crop-weed interactions. AoB Plants., 15(3), plad013. doi: 10.1093/aobpla/plad013.
14. Huber, M., Nieuwendijk, N., Pantazopoulou, C., Pierik, R. (2021). Light signalling shapes plant–plant interactions in dense canopies. Plant Cell Environment., 44, 1014–1029.
15. Hutianskyi, R., Popov, S., Zuza, V., & Kuzmenko, N. (2022). Weediness of corn for grain crops by cultivation in the stationary crop rotation and permanent crops in the Eastern Forest Steppe of Ukraine. Quarantine and Plant Protection., 3, 15-19. doi.org/10.36495/2312-0614.2022.3.15-19
16. Jabran, K. & Farooq, M. (2013). Implications of potential allelopathic crops in agricultural systems. Allelopathy., 349–385. Berlin: Springer. doi:10.1007/978-3-642-30595-5_15.
17. Jabran, K., Cheema, Z. A., Khan, M. B. & Hussain, M. (2016). Control of cabbage aphid brevicoryne brassicae (Homoptera: Aphididae) through allelopathic water extracts. Pakistan journal of scientific and industrial research. Series B: Biological Sciences., 59, 48–51.
18. Jabran, K., Mahajan, G., Sardana, V. & Chauhan, B. S. (2015). Allelopathy for weed control in agricultural systems. Crop Protection., 72, 57–65. doi:10.1016/j.cropro.2015.03.004.
19. Karpenko O. Yu., Rozhko V. M., Butenko A. O., Masyk I. M., Malynka L. V., Didur I. M., Vereshchahin I. V., Chyrva A. S. & Berdin S. I. (2019). Post-harvest siderates impact on the weed littering of Maize. Ukrainian Journal of Ecology., 9 (3). 300-303.
20. Kong, C., Zhang, S., Li, Y., Xia, Z., Yang, X., Meiners, S. & Wang, P. (2018). Plant neighbor detection and allelochemical response are driven by root-secreted signaling chemicals. Nature Communications., 9, 1–9.
21. Kołodziejczyk, M. (2015). The effect of living mulches and conventional methods of weed control on weed infestation and potato yield. Scientia Horticulturae., 191, 127–133. doi: 10.1016/j.scienta.2015.05.016.
22. Kunz, C., Sturm, D., Varnholt, D., Walker, F. & Gerhards, R. (2016). Allelopathic effects and weed suppressive ability of cover crops. Plant, Soil and Environment., 62, 60–66. doi:10.17221/612/2015-pse.
23. Kyryliuk, V. P. (2013). Vplyv tryvalogo zastosuvannja system osnovnogo obrobitku g'runtu na zabur’janenist' sivozminy [The influence of long-term use of systems of the basic soil cultivation on the weediness of crop rotation] Podillian state agrarian and engineering university collection, 21, 39-43 (in Ukrainian).
24. Lawley, Y. E., Weil, R. R. & Teasdale J. R. (2011). Forage radish cover crop suppresses winter annual weeds in fall and before corn planting. Agronomy Journal, 103, 137–144. doi:10.2134/agronj2010.0187.
25. Legris, M., Nieto, C., Sellaro, R., Prat, S. & Casal, J. (2017). Perception and signalling of light and temperature cues in plants. The Plant Journal, 90, 683–697.
26. Li, L., Zhao, H. & Kong, C. (2020). Loliolide the most ubiquitous lactone is involved in barnyardgrass-induced rice allelopathy. Journal of Experimental Botany., 71, 1540–1550.
27. Malinovsky, F., Thomsen, M., Nintemann, S., Jagd, L., Bourgine, B., Burow, M. & Kliebenstein, D. (2017). An evolutionarily young defense metabolite influences the root growth of plants via the ancient TOR signaling pathway. Elife., 6, e29353.
28. McErlich, A. F. & Boydston, R. A. (2013). Current State of Weed Management in Organic and Conventional Cropping Systems. Automation: The Future of Weed Control in Cropping Systems., 11–32. doi:10.1007/978-94-007-7512-1_2.
29. Melander, B., Liebman, M., Davis, A. S., Gallandt, E. R., Bàrberi, P., Moonen, A.-C., Rasmussen, J., van der Weide, R. & Vidotto, F. (2017) Non-chemical weed management, in weed research: Expanding Horizons (eds P. E. Hatcher and R. J. Froud-Williams), John Wiley & Sons, Ltd, Chichester, UK., 245–270. doi: 10.1002/9781119380702.ch9
30. Mishchenko, Y. G., Zakharchenko, E.A., Berdin, S.I., Kharchenko, O.V., Ermantraut, E.R., Masyk, I.M. & Tokman, V.S. (2019) Herbological monitoring of efficiency of tillage practice and green manure in potato agrocenosis. Ukrainian Journal of Ecology, 9(1), 210–219. doi: 10.15421/2017_154.
31. Mishchenko, Y., Kovalenko, I., Butenko, A., Danko, Y., Trotsenko, V., Masyk, I., Zakharchenko, E., Hotvianska, A., Kyrsanova, G., and Datsko, O. (2022). Post-Harvest Siderates and Soil Hardness. Ecological Engineering & Environmental Technology., 23(3), 54-63. doi: 10.12912/27197050/147148
32. Ninkovic, V., Rensing, M., Dahlin, I. & Markovic, D. (2019). Who is my neighbor? Volatile cues in plant interactions. Plant Signaling Behavior., 14:1634993.
33. Peters, K., Breitsameter, L. & Gerowitt, B. (2014). Impact of climate change on weeds in agriculture – a review. Agron. Sustain. Dev., 34, 707–721. doi:10.1007/s13593-014-0245-2.
34. Petit, S. & Cordeau, S. (2022). Biological Control for Weed Management. In: Fauvergue, X., et al. Extended Biocontrol. Springer, Dordrecht. doi: 10.1007/978-94-024-2150-7_8
35. Petit, S., Cordeau, S., Chauvel, B., Bohan, D., Guillemin, J. P., & Steinberg, C. (2018). Biodiversity-based options for arable weed management. A review. Agronomy for Sustainable Development, 38, 1–21. doi.org/10.1007/s13593-018-0525-3
36. Price, A. J. & Norsworthy, J. K. (2013). Cover crops for weed management in southern reduced-tillage vegetable cropping systems. Weed Technology, 27, 212–217. doi:10.1614/wt-d-12-00056.1.
37. Pupalienė, R., Sinkevičienė, A., Jodaugienė, D. & Bajorienė, K. (2015). Weed Control by Organic Mulch in Organic Farming System. Weed Biology and Control. doi:10.5772/60120.
38. Romaneckas, K., Šarauskis, E., Avižienytė, D. & Adamavičienė, A. (2015). Weed Control by Soil Tillage and Living Mulch. Weed Biology and Control. doi:10.5772/60030.
39. Santín-Montanyá, M. I., Martín-Lammerding D., Zambrana E., Tenorio J. L. (2016). Management of weed emergence and weed seed bank in response to different tillage, cropping systems and selected soil properties. Soil and Tillage Research., 161, 38–46. doi:10.1016/j.still.2016.03.007.
40. Scherner, A., Melander, B. & Kudsk, P. (2016). Vertical distribution and composition of weed seeds within the plough layer after eleven years of contrasting crop rotation and tillage schemes. Soil and Tillage Research., 161, 135–142. doi.10.1016/j.still.2016.04.005.
41. Shikula, M., Antonets, S., Balaev, A., Bilyanovska, T., Glushchenko, O., Grytsay, M., Demydenko, O., Sax, R., Kal'na-Dubinyuk, T., Kapshtyk, M., Kilher, L., Kysil', V., Kravchenko, Y., Luk'yanenko, A., Makarchuk, O., Man'ko, Y., Melnychuk, D., Petrenko, L., Ridey, N., Rogovsky, S., Sanchenko, R., Tarariko, O., Tarariko, Y., Ferenz, A. & Chernylevsky, M. (2000). G'runtozahysna biologichna systema zemlerobstva v Ukrai'ni [Soil-protective biological crop production system in Ukraine]. Oranta, Kyiv., 389. (in Ukrainian).
2. Casal, J.J. & Qüesta, J.I. (2018). Light and temperature cues: multitasking receptors and transcriptional integrators. New Phytologist., 217, 1029-1034.
3. Chauhan, B.S. & Mahajan, G. eds. (2014). Recent advances in weed management. Springer science±business media New York. doi: 10.1007/978-1-4939-1019-9.
4. Cordeau, S., Smith, R., Gallandt, E., Brown, B., Salon, P., DiTommaso, A., & Ryan, M. (2017). Timing of tillage as a driver of weed communities. Weed Science., 65(4), 504–514. doi:10.1017/wsc.2017.26.
5. Dvořák, P., Tomášek, J., Hamouz, K., & Kuchtová, P. (2016). Reply of mulch systems on weeds and yield components in potatoes. Plant, Soil and Environment., 61(7), 322–327. doi:10.17221/242/2015-pse.
6. Farhood, Y., Saeed, Z. S., Ghassem, A., Farideh, S. & Vahid, B. (2015). Effects of cover crops and weed management on corn yield / Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences., 14(2), 178–181. doi: 10.1016/j.jssas.2014.02.001.
7. Fernández-Milmanda, G.L. & Ballaré, C.L. (2021). Shade avoidance: expanding the color and hormone palette. Trends in Plant Science., 265, 509–523.
8. Hudz, V.P., Shuvar, I.A., Yunyk, A.V., Rykhlivskyi, I.P. & Mishchenko, Yu.H. (2014). Adaptyvni systemy zemlerobstva : pidruchnyk / Za red. Hudzia V.P. Kyiv: Tsentr uchbovoi literatury., 336. (in Ukrainian).
9. Haramoto, E. R., & Gallandt, E. R. (2004). Brassica cover cropping for weed management: A review. Renewable agriculture and food systems., 19, 187–198. doi:10.1079/rafs200490.
10. Horvath, D., Bruggeman, S., Moriles-Miller, J., Anderson, J., Dogramaci, M., Scheffler, B. & Clay, S. (2018). Weed presence altered biotic stress and light signaling in maize even when weeds were removed early in the critical weed-free period. Plant Direct., 2(4), e00057. doi: 10.1002/pld3.57.
11. Horvath, D., Clay, S., Bruggeman, S., Anderson, J., Chao, W. & Yeater, K. (2019). Varying weed densities alter the corn transcriptome highlighting a core set of weed-induced genes and processes with potential for manipulating weed tolerance. The Plant Genome., 12(3), 1-9. doi: 10.3835/plantgenome2019.05.0035.
12. Horvath, D., Clay, S., Swanton, C., Anderson, J. & Chao, W. (2022). Weed-induced crop yield loss: a new paradigm and new challenges. Trends in Plant Science., 28, 567–582. doi: 10.1016/j.tplants. 2022.12.014.
13. Horvath, D., Doherty, C., Desai, J., Clark, N., Anderson, J. & Chao, W. (2023). Weed-induced changes in the maize root transcriptome reveal transcription factors and physiological processes impacted early in crop-weed interactions. AoB Plants., 15(3), plad013. doi: 10.1093/aobpla/plad013.
14. Huber, M., Nieuwendijk, N., Pantazopoulou, C., Pierik, R. (2021). Light signalling shapes plant–plant interactions in dense canopies. Plant Cell Environment., 44, 1014–1029.
15. Hutianskyi, R., Popov, S., Zuza, V., & Kuzmenko, N. (2022). Weediness of corn for grain crops by cultivation in the stationary crop rotation and permanent crops in the Eastern Forest Steppe of Ukraine. Quarantine and Plant Protection., 3, 15-19. doi.org/10.36495/2312-0614.2022.3.15-19
16. Jabran, K. & Farooq, M. (2013). Implications of potential allelopathic crops in agricultural systems. Allelopathy., 349–385. Berlin: Springer. doi:10.1007/978-3-642-30595-5_15.
17. Jabran, K., Cheema, Z. A., Khan, M. B. & Hussain, M. (2016). Control of cabbage aphid brevicoryne brassicae (Homoptera: Aphididae) through allelopathic water extracts. Pakistan journal of scientific and industrial research. Series B: Biological Sciences., 59, 48–51.
18. Jabran, K., Mahajan, G., Sardana, V. & Chauhan, B. S. (2015). Allelopathy for weed control in agricultural systems. Crop Protection., 72, 57–65. doi:10.1016/j.cropro.2015.03.004.
19. Karpenko O. Yu., Rozhko V. M., Butenko A. O., Masyk I. M., Malynka L. V., Didur I. M., Vereshchahin I. V., Chyrva A. S. & Berdin S. I. (2019). Post-harvest siderates impact on the weed littering of Maize. Ukrainian Journal of Ecology., 9 (3). 300-303.
20. Kong, C., Zhang, S., Li, Y., Xia, Z., Yang, X., Meiners, S. & Wang, P. (2018). Plant neighbor detection and allelochemical response are driven by root-secreted signaling chemicals. Nature Communications., 9, 1–9.
21. Kołodziejczyk, M. (2015). The effect of living mulches and conventional methods of weed control on weed infestation and potato yield. Scientia Horticulturae., 191, 127–133. doi: 10.1016/j.scienta.2015.05.016.
22. Kunz, C., Sturm, D., Varnholt, D., Walker, F. & Gerhards, R. (2016). Allelopathic effects and weed suppressive ability of cover crops. Plant, Soil and Environment., 62, 60–66. doi:10.17221/612/2015-pse.
23. Kyryliuk, V. P. (2013). Vplyv tryvalogo zastosuvannja system osnovnogo obrobitku g'runtu na zabur’janenist' sivozminy [The influence of long-term use of systems of the basic soil cultivation on the weediness of crop rotation] Podillian state agrarian and engineering university collection, 21, 39-43 (in Ukrainian).
24. Lawley, Y. E., Weil, R. R. & Teasdale J. R. (2011). Forage radish cover crop suppresses winter annual weeds in fall and before corn planting. Agronomy Journal, 103, 137–144. doi:10.2134/agronj2010.0187.
25. Legris, M., Nieto, C., Sellaro, R., Prat, S. & Casal, J. (2017). Perception and signalling of light and temperature cues in plants. The Plant Journal, 90, 683–697.
26. Li, L., Zhao, H. & Kong, C. (2020). Loliolide the most ubiquitous lactone is involved in barnyardgrass-induced rice allelopathy. Journal of Experimental Botany., 71, 1540–1550.
27. Malinovsky, F., Thomsen, M., Nintemann, S., Jagd, L., Bourgine, B., Burow, M. & Kliebenstein, D. (2017). An evolutionarily young defense metabolite influences the root growth of plants via the ancient TOR signaling pathway. Elife., 6, e29353.
28. McErlich, A. F. & Boydston, R. A. (2013). Current State of Weed Management in Organic and Conventional Cropping Systems. Automation: The Future of Weed Control in Cropping Systems., 11–32. doi:10.1007/978-94-007-7512-1_2.
29. Melander, B., Liebman, M., Davis, A. S., Gallandt, E. R., Bàrberi, P., Moonen, A.-C., Rasmussen, J., van der Weide, R. & Vidotto, F. (2017) Non-chemical weed management, in weed research: Expanding Horizons (eds P. E. Hatcher and R. J. Froud-Williams), John Wiley & Sons, Ltd, Chichester, UK., 245–270. doi: 10.1002/9781119380702.ch9
30. Mishchenko, Y. G., Zakharchenko, E.A., Berdin, S.I., Kharchenko, O.V., Ermantraut, E.R., Masyk, I.M. & Tokman, V.S. (2019) Herbological monitoring of efficiency of tillage practice and green manure in potato agrocenosis. Ukrainian Journal of Ecology, 9(1), 210–219. doi: 10.15421/2017_154.
31. Mishchenko, Y., Kovalenko, I., Butenko, A., Danko, Y., Trotsenko, V., Masyk, I., Zakharchenko, E., Hotvianska, A., Kyrsanova, G., and Datsko, O. (2022). Post-Harvest Siderates and Soil Hardness. Ecological Engineering & Environmental Technology., 23(3), 54-63. doi: 10.12912/27197050/147148
32. Ninkovic, V., Rensing, M., Dahlin, I. & Markovic, D. (2019). Who is my neighbor? Volatile cues in plant interactions. Plant Signaling Behavior., 14:1634993.
33. Peters, K., Breitsameter, L. & Gerowitt, B. (2014). Impact of climate change on weeds in agriculture – a review. Agron. Sustain. Dev., 34, 707–721. doi:10.1007/s13593-014-0245-2.
34. Petit, S. & Cordeau, S. (2022). Biological Control for Weed Management. In: Fauvergue, X., et al. Extended Biocontrol. Springer, Dordrecht. doi: 10.1007/978-94-024-2150-7_8
35. Petit, S., Cordeau, S., Chauvel, B., Bohan, D., Guillemin, J. P., & Steinberg, C. (2018). Biodiversity-based options for arable weed management. A review. Agronomy for Sustainable Development, 38, 1–21. doi.org/10.1007/s13593-018-0525-3
36. Price, A. J. & Norsworthy, J. K. (2013). Cover crops for weed management in southern reduced-tillage vegetable cropping systems. Weed Technology, 27, 212–217. doi:10.1614/wt-d-12-00056.1.
37. Pupalienė, R., Sinkevičienė, A., Jodaugienė, D. & Bajorienė, K. (2015). Weed Control by Organic Mulch in Organic Farming System. Weed Biology and Control. doi:10.5772/60120.
38. Romaneckas, K., Šarauskis, E., Avižienytė, D. & Adamavičienė, A. (2015). Weed Control by Soil Tillage and Living Mulch. Weed Biology and Control. doi:10.5772/60030.
39. Santín-Montanyá, M. I., Martín-Lammerding D., Zambrana E., Tenorio J. L. (2016). Management of weed emergence and weed seed bank in response to different tillage, cropping systems and selected soil properties. Soil and Tillage Research., 161, 38–46. doi:10.1016/j.still.2016.03.007.
40. Scherner, A., Melander, B. & Kudsk, P. (2016). Vertical distribution and composition of weed seeds within the plough layer after eleven years of contrasting crop rotation and tillage schemes. Soil and Tillage Research., 161, 135–142. doi.10.1016/j.still.2016.04.005.
41. Shikula, M., Antonets, S., Balaev, A., Bilyanovska, T., Glushchenko, O., Grytsay, M., Demydenko, O., Sax, R., Kal'na-Dubinyuk, T., Kapshtyk, M., Kilher, L., Kysil', V., Kravchenko, Y., Luk'yanenko, A., Makarchuk, O., Man'ko, Y., Melnychuk, D., Petrenko, L., Ridey, N., Rogovsky, S., Sanchenko, R., Tarariko, O., Tarariko, Y., Ferenz, A. & Chernylevsky, M. (2000). G'runtozahysna biologichna systema zemlerobstva v Ukrai'ni [Soil-protective biological crop production system in Ukraine]. Oranta, Kyiv., 389. (in Ukrainian).
Опубліковано
2023-12-27
Як цитувати
Міщенко, Ю. Г., Масик, І. М., Давиденко, Г. А., Литвиненко, А. В., Риженко, А. Т., & Сєвідов, О. А. (2023). КОНТРОЛЬ ЗА БУР’ЯНАМИ ПРИ ВИРОЩУВАННІ КУКУРУДЗИ. Вісник Сумського національного аграрного університету. Серія: Агрономія і біологія, 53(3), 43-51. https://doi.org/10.32782/agrobio.2023.3.6
ISSN 
ISSN 
